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H5N1亚型禽流感病毒感染鸭胚成纤维细胞miRNA表达谱的研究

摘要第3-5页
Abstract第5-6页
英文缩略表第7-12页
1 前言第12-18页
    1.1 研究背景第12-15页
        1.1.1 流感病毒概述第12页
        1.1.2 流感病毒的结构第12-13页
        1.1.3 禽流感病毒理化特性第13页
        1.1.4 禽流感流行特点第13页
        1.1.5 禽流感的临床症状和病理变化第13-14页
        1.1.6 禽流感的诊断与预防第14页
        1.1.7 水禽禽流感研究进展第14-15页
    1.2 miRNA第15-17页
        1.2.1 miRNA的发现第15页
        1.2.2 miRNA与禽流感病毒第15-16页
        1.2.3 miRNA的应用前景第16-17页
    1.3 本研究的目的及意义第17-18页
2 材料和方法第18-28页
    2.1 实验材料第18-19页
        2.1.1 病毒、质粒和细胞第18页
        2.1.2 主要试剂第18-19页
        2.1.3 部分试剂配方第19页
        2.1.4 主要仪器第19页
    2.2 实验方法第19-28页
        2.2.1 鸭胚成纤维细胞(DEF)制备第19-20页
        2.2.2 DEF的转染第20页
        2.2.3 DEF感染实验第20页
        2.2.4 细胞总RNA抽提第20页
        2.2.5 RNA质量鉴定第20-21页
        2.2.6 逆转录第21页
        2.2.7 Hiseq深度测序第21页
        2.2.8 小RNA的生物信息学分析第21-22页
        2.2.9 基因组比对第22页
        2.2.10 新miRNA预测第22页
        2.2.11 miRNA差异分析第22页
        2.2.12 miRNA靶基因预测第22页
        2.2.13 差异表达的mi RNA的GO富集分析第22页
        2.2.14 miRNA表达丰度测定第22-24页
        2.2.15 miRNA差异分析荧光定量引物设计第24页
        2.2.16 目的片段扩增第24-25页
        2.2.17 凝胶产物回收第25页
        2.2.18 DNA片段的连接与转化第25页
        2.2.19 目的片段序列测定第25-26页
        2.2.20 转染质粒质粒抽提第26-27页
        2.2.21 荧光素酶活性检测第27页
        2.2.22 DEF的收集和裂解第27页
        2.2.23 Western blot检测第27页
        2.2.24 统计学分析第27-28页
3 结果与分析第28-42页
    3.1 RNA样品制备第28-29页
    3.2 高通量数据分析第29-33页
        3.2.1 数据质量及长度分布第29页
        3.2.2 已知mi RNA比对第29-30页
        3.2.3 新miRNA预测第30-32页
        3.2.4 miRNA的差异分析第32页
        3.2.5 差异表达的已知miRNA的靶基因预测第32页
        3.2.6 差异表达的已知miRNA的GO富集分析第32-33页
    3.3 DK383感染DEF后IL-12 表达情况第33-34页
    3.4 调控IL-12 表达的候选miRNA筛选第34-35页
    3.5 miR-6125 对IL-12 表达的调控作用研究第35-37页
    3.6 IL-12m RNA与miR-6125 的靶向关系验证第37-38页
    3.7 miR-6125 的调控作用研究第38-42页
4 讨论与结论第42-45页
    4.1 DK383对水禽miRNA表达谱影响第42页
    4.2 miR-6125对细胞因子表达的调节第42-43页
    4.3 miR-6125对禽流感病毒复制的影响第43-45页
全文总结第45-46页
致谢第46-47页
参考文献第47-52页
附录A pCI-neo质粒第52-53页
附录B psi-CHECK2质粒第53-54页
附表1 差异表达的已知miRNA第54-58页
发表文章第58页

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