| 摘要 | 第2-4页 |
| SUMMARY | 第4-5页 |
| 缩略词 | 第6-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-30页 |
| 前言 | 第10页 |
| 1.1 果树病毒侵染及危害 | 第10-11页 |
| 1.2 果树病毒病研究概况 | 第11-12页 |
| 1.3 果树病毒检测技术 | 第12-19页 |
| 1.3.1 生物学鉴定法 | 第12-13页 |
| 1.3.2 电子显微镜技术检测法 | 第13-14页 |
| 1.3.3 血清学鉴定法 | 第14-16页 |
| 1.3.3.1 酶联免疫吸附法 | 第14-15页 |
| 1.3.3.1.1 双抗体夹心法 | 第14-15页 |
| 1.3.3.1.2 间接法 | 第15页 |
| 1.3.3.2 点免疫结合测定技术 | 第15-16页 |
| 1.3.4 分子生物学检测法 | 第16-18页 |
| 1.3.4.1 分子杂交技术 | 第16页 |
| 1.3.4.2 双链RNA（ds RNA）分析法 | 第16-17页 |
| 1.3.4.3 聚合酶链式反应（PCR） | 第17页 |
| 1.3.4.4 酶联免疫结合PCR技术（PCR-ELISA） | 第17-18页 |
| 1.3.5 其他方法 | 第18-19页 |
| 1.3.5.1 免疫电镜法 | 第18页 |
| 1.3.5.2 免疫捕获PCR(IC-PCR) | 第18-19页 |
| 1.4 植物病毒的脱毒技术 | 第19-23页 |
| 1.4.1 热处理法 | 第19-20页 |
| 1.4.2 茎尖组织培养法 | 第20页 |
| 1.4.3 热处理结合茎尖脱毒法 | 第20-21页 |
| 1.4.4 茎尖微体嫁接 | 第21页 |
| 1.4.5 花药培养法 | 第21页 |
| 1.4.6 抗病毒剂法 | 第21-22页 |
| 1.4.7 超低温脱毒法（冷疗法） | 第22-23页 |
| 1.5 苹果病毒的研究进展 | 第23-26页 |
| 1.5.1 苹果病毒种类 | 第23-25页 |
| 1.5.2 苹果脱毒方法 | 第25页 |
| 1.5.3 苹果病毒检测方法 | 第25-26页 |
| 1.6 试管苗生根与移栽 | 第26-28页 |
| 1.7 研究内容及目的意义 | 第28-29页 |
| 1.8 技术路线图 | 第29-30页 |
| 第二章 ‘嘎啦’苹果试管苗脱毒体系的建立 | 第30-37页 |
| 2.1 试验材料与方法 | 第30-33页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第30-31页 |
| 2.1.2 试验方法 | 第31-33页 |
| 2.1.2.1 茎尖培养诱导分化培养基的筛选 | 第31页 |
| 2.1.2.2 热处理的温度试验 | 第31页 |
| 2.1.2.3 不同浓度RBV处理脱毒 | 第31-32页 |
| 2.1.2.4 结果统计方法 | 第32页 |
| 2.1.2.5 数据处理 | 第32-33页 |
| 2.2 结果与分析 | 第33-35页 |
| 2.2.1 不同培养基及激素浓度对茎尖培养的影响 | 第33页 |
| 2.2.2 不同培养基及激素浓度对茎尖分化增殖的影响 | 第33-34页 |
| 2.2.3 不同热处理方法对组培苗生长的影响 | 第34-35页 |
| 2.2.4 不同浓度利巴韦林对组培苗成活率的影响 | 第35页 |
| 2.3 讨论 | 第35-37页 |
| 2.3.1 不同培养基及激素浓度对茎尖培养的影响 | 第35-36页 |
| 2.3.2 不同热处理对组培苗生长的影响 | 第36-37页 |
| 第三章 苹果病毒检测体系 | 第37-57页 |
| 3.1 材料与方法 | 第37-43页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第37-38页 |
| 3.1.1.1 四个苹果材料的病毒检测 | 第37页 |
| 3.1.1.2 脱毒材料检测 | 第37-38页 |
| 3.1.2 试验方法 | 第38-43页 |
| 3.1.2.1 四种脱毒方法 | 第38-39页 |
| 3.1.2.2 PCR检测 | 第39-42页 |
| 3.1.2.3 ELISA检测 | 第42-43页 |
| 3.2 结果与分析 | 第43-55页 |
| 3.2.1 四个苹果材料的带毒状况检测 | 第43-44页 |
| 3.2.2 四种脱毒方法的PCR检测 | 第44-52页 |
| 3.2.2.1 茎尖脱毒效果检测 | 第44-46页 |
| 3.2.2.2 热处理脱毒效果检测 | 第46-47页 |
| 3.2.2.3 热处理结合茎尖脱毒效果检测 | 第47-48页 |
| 3.2.2.4 抗病毒剂利巴韦林脱毒效果检测 | 第48-52页 |
| 3.2.3 四种脱毒方法的ELISA检测 | 第52-55页 |
| 3.2.3.1 茎尖培养脱毒效果的ELISA检测 | 第52页 |
| 3.2.3.2 热处理脱毒效果的ELISA检测 | 第52-53页 |
| 3.2.3.3 热处理结合茎尖培养脱毒效果的ELISA检测 | 第53-54页 |
| 3.2.3.4 不同浓度利巴韦林处理脱毒效果的ELISA检测 | 第54-55页 |
| 3.3 讨论 | 第55-57页 |
| 3.3.1 PCR检测与ELISA检测的比较 | 第55页 |
| 3.3.2 四种脱毒方法脱毒效果的比较 | 第55-57页 |
| 第四章 ‘嘎啦’苹果试管苗生根培养基的筛选及SA对试管苗移栽的生理效应 | 第57-69页 |
| 4.1 材料与方法 | 第57-60页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第57-58页 |
| 4.1.2 试验设计及方法 | 第58-59页 |
| 4.1.2.1 诱导生根的不同培养基及激素组合 | 第58页 |
| 4.1.2.2 生根培养基的筛选 | 第58-59页 |
| 4.1.2.3 测定方法及数据分析方法 | 第59页 |
| 4.1.2.4 试管苗的移栽 | 第59页 |
| 4.1.2.5 水杨酸浓度的筛选 | 第59页 |
| 4.1.3 数据处理 | 第59-60页 |
| 4.2 结果与分析 | 第60-66页 |
| 4.2.1 不同处理组合对‘嘎啦’试管苗生根率的影响 | 第60页 |
| 4.2.2 不同处理对单株生根条数的影响 | 第60-61页 |
| 4.2.3 不同处理组合对‘嘎啦’试管苗根重的影响 | 第61-62页 |
| 4.2.4 不同处理组合对‘嘎啦’试管苗根长的影响 | 第62-63页 |
| 4.2.5 不同生根培养基对‘嘎啦’试管苗根系活力的影响 | 第63-64页 |
| 4.2.6 SA对‘嘎啦’试管苗移栽的效应 | 第64-66页 |
| 4.2.6.1 SA对移栽试管苗成活率的影响 | 第64页 |
| 4.2.6.2 水杨酸对移栽试管苗叶片叶绿素含量的影响 | 第64-65页 |
| 4.2.6.3 水杨酸对移栽试管苗叶片气孔开度的影响 | 第65-66页 |
| 4.2.6.4 移栽成活率与叶绿素和气孔开度的相关性分析 | 第66页 |
| 4.3 讨论 | 第66-69页 |
| 4.3.1 生根培养基的筛选 | 第66-68页 |
| 4.3.1.1 基本培养基对生根的影响 | 第66-67页 |
| 4.3.1.2 激素对生根的影响 | 第67页 |
| 4.3.1.3 不同处理对试管苗根系活力的影响 | 第67-68页 |
| 4.3.2 SA对 ‘嘎啦’试管苗移栽的影响 | 第68-69页 |
| 4.3.2.1 SA处理对移栽试管苗叶绿素含量的影响 | 第68页 |
| 4.3.2.2 SA处理对移栽试管苗叶片气孔开闭的影响 | 第68-69页 |
| 结论 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-79页 |
| 附录 | 第79-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 作者简介 | 第82-83页 |
| 导师简介 | 第83-84页 |
