中文摘要 | 第6-11页 |
ABSTRACT | 第11-16页 |
前言 | 第17-18页 |
综述 | 第18-28页 |
1 酸枣仁 | 第18-19页 |
1.1 酸枣仁的药材来源 | 第18页 |
1.2 酸枣仁的性味、功效与主治 | 第18页 |
1.3 酸枣仁的炮制 | 第18页 |
1.4 酸枣仁的药理作用 | 第18-19页 |
2 基底前脑伏隔核区域在觉醒-睡眠发生的作用 | 第19-21页 |
2.1 基底前脑及伏隔核的解剖位置 | 第19页 |
2.2 基底前脑中伏隔核区域的单胺类神经递质 | 第19-20页 |
2.3 基底前脑中伏隔核区域的单胺类神经递质在觉醒-睡眠发生中的作用 | 第20-21页 |
3 脑内单胺类神经递质含量测定方法 | 第21-24页 |
3.1 同位素示踪法 | 第21页 |
3.2 免疫法 | 第21页 |
3.3 荧光法 | 第21-22页 |
3.4 色谱法 | 第22页 |
3.5 微透析技术 | 第22-24页 |
4 睡眠剥夺的方法 | 第24-26页 |
4.1 平台睡眠剥夺睡眠法 | 第24页 |
4.2 强迫运动睡眠剥夺法 | 第24页 |
4.3 轻柔刺激睡眠剥夺法 | 第24-25页 |
4.4 光照睡眠剥夺法 | 第25-26页 |
5 本实验的研究思路和技术路线 | 第26-28页 |
5.1 研究思路 | 第26-27页 |
5.2 技术路线 | 第27-28页 |
实验部分 | 第28-52页 |
第一部分 LD条件下,24小时大鼠伏隔核区域内单胺类神经递质变化的研究 | 第28-39页 |
1 实验材料 | 第28-29页 |
1.1 实验动物 | 第28页 |
1.2 实验仪器 | 第28页 |
1.3 实验试剂 | 第28-29页 |
2 实验条件 | 第29页 |
3 实验方法 | 第29-33页 |
3.1 大鼠AcbC区域微透析套管的埋置与位置判定 | 第29-31页 |
3.2 人工脑脊液的配置 | 第31页 |
3.3 微透析探针的处理及体外相对回收样品 | 第31页 |
3.4 大鼠AcbC区域微透析 | 第31页 |
3.5 高效液相—电化学检测脑透析液中单胺类神经递质含量 | 第31-33页 |
3.6 统计分析 | 第33页 |
4 实验结果 | 第33-39页 |
4.1 组织学考察 | 第33-34页 |
4.2 标准曲线和线性范围 | 第34-35页 |
4.3 微透析样品的测定 | 第35-39页 |
第二部分 LL条件下,24小时大鼠伏隔核区域内单胺类神经递质变化的研究 | 第39-45页 |
1 实验材料 | 第39-40页 |
1.1 实验动物 | 第39页 |
1.2 实验仪器 | 第39页 |
1.3 实验试剂 | 第39-40页 |
2 实验条件 | 第40页 |
3 实验方法 | 第40-41页 |
3.1 大鼠AcbC区域微透析套管的埋置及位置判定 | 第40页 |
3.2 透析探针的处理及体外回收率测定 | 第40-41页 |
3.3 大鼠AcbC区域微透析 | 第41页 |
3.4 高效液相—电化学检测脑透析液中单胺类神经递质含量 | 第41页 |
3.5 统计分析 | 第41页 |
4 实验结果 | 第41-45页 |
4.1 组织学考察 | 第41页 |
4.2 标准曲线和线性范围 | 第41页 |
4.3 微透析样品的测定 | 第41-45页 |
第三部分 LL条件下,酸枣仁冻干粉对24小时大鼠伏隔核区域内单胺类神经递质变化的研究 | 第45-52页 |
1 实验材料 | 第45-46页 |
1.1 实验动物 | 第45页 |
1.2 实验药物与制备 | 第45页 |
1.3 实验仪器 | 第45-46页 |
1.4 实验试剂 | 第46页 |
2 实验条件 | 第46页 |
3 实验方法 | 第46-48页 |
3.1 大鼠AcbC中微透析套管的埋置与位置判定 | 第46-47页 |
3.2 微透析探针的处理及体外回收率测定 | 第47页 |
3.3 大鼠AcbC区域微透析 | 第47页 |
3.4 高效液相—电化学检测脑微透析液中单胺类神经递质含量 | 第47-48页 |
3.5 统计分析 | 第48页 |
4 实验结果 | 第48-52页 |
4.1 组织学考察 | 第48页 |
4.2 标准曲线和线性范围 | 第48页 |
4.3 微透析样品的测定 | 第48-52页 |
讨论 | 第52-54页 |
结论 | 第54-55页 |
致谢 | 第55-56页 |
参考文献 | 第56-59页 |
攻读硕士期间发表的论文 | 第59-62页 |
创新点说明 | 第62-63页 |
个人简历 | 第63页 |