| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略词表 | 第8-12页 |
| 第1章 前言 | 第12-19页 |
| 1.1 食源性肽 | 第12-14页 |
| 1.1.1 食源性肽介绍 | 第12页 |
| 1.1.2 食源性肽生产方法 | 第12-13页 |
| 1.1.3 食源性肽的分离纯化途经 | 第13页 |
| 1.1.4 食源性肽的分析及结构鉴定 | 第13-14页 |
| 1.1.5 食源性肽功能 | 第14页 |
| 1.2 细胞迁移 | 第14-15页 |
| 1.3 胰腺癌 | 第15-16页 |
| 1.4 创伤愈合 | 第16-17页 |
| 1.4.1 伤口愈合的形成 | 第16页 |
| 1.4.2 创伤愈合的主要细胞成分 | 第16-17页 |
| 1.5 本文立题依据 | 第17-19页 |
| 第2章 大豆肽LVTVPQF对胰腺癌细胞迁移的抑制作用机制研究 | 第19-33页 |
| 2.1 背景 | 第19页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第19-23页 |
| 2.2.1 材料 | 第19页 |
| 2.2.2 试剂 | 第19-20页 |
| 2.2.3 溶液配制 | 第20-22页 |
| 2.2.4 实验仪器 | 第22-23页 |
| 2.3 实验方法 | 第23-27页 |
| 2.3.1 细胞培养 | 第23页 |
| 2.3.2 细胞复苏 | 第23页 |
| 2.3.3 细胞冻存 | 第23页 |
| 2.3.4 愈伤实验分析 | 第23-24页 |
| 2.3.5 MTS实验分析 | 第24页 |
| 2.3.6 Transwell Assay实验分析 | 第24-25页 |
| 2.3.7 Invasion Assay实验分析 | 第25页 |
| 2.3.8 Western Blot检测及分析 | 第25-27页 |
| 2.4 实验结果 | 第27-32页 |
| 2.4.1 筛选抑制细胞迁移作用的大豆肽 | 第27-28页 |
| 2.4.2 LVTVPQF对MIAPACA-2 细胞增殖影响 | 第28-29页 |
| 2.4.3 LVTVPQF对细胞迁移的作用 | 第29-30页 |
| 2.4.4 LVTVPQF对细胞侵袭作用 | 第30-31页 |
| 2.4.5 Western Blot检测及分析 | 第31-32页 |
| 2.5 讨论与小结 | 第32-33页 |
| 第3章 蛋清肽对皮肤细胞迁移作用研究 | 第33-45页 |
| 3.1 背景 | 第33页 |
| 3.2 材料与设备 | 第33-35页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第33-34页 |
| 3.2.2 仪器与设备 | 第34-35页 |
| 3.3 实验方法 | 第35-37页 |
| 3.3.1 蛋清肽的酶解工艺及超滤分离技术 | 第35页 |
| 3.3.2 不同分子量多肽促细胞迁移评价系统 | 第35-36页 |
| 3.3.3 葡聚糖凝胶色谱分离技术 | 第36页 |
| 3.3.4 不同分子量多肽体外促细胞迁移评价系统 | 第36页 |
| 3.3.5 人工合成多肽体外促细胞迁移作用研究 | 第36-37页 |
| 3.4 实验结果 | 第37-43页 |
| 3.4.1 蛋清肽酶解物对HaCaT细胞愈伤实验的测定 | 第37-38页 |
| 3.4.2 蛋清肽酶解物对HaCaT细胞增殖作用影响 | 第38-39页 |
| 3.4.3 EWPH1（超滤）对HaCaT细胞迁移作用的影响 | 第39-40页 |
| 3.4.4 EWPH1（超滤）组分经过葡聚糖凝胶分离 | 第40页 |
| 3.4.5 蛋清肽SephadexG-15 分离组分对细胞迁移的影响 | 第40-41页 |
| 3.4.6 KPHAEVVLR对HaCaT细胞迁移及增殖作用的影响 | 第41-43页 |
| 3.5 讨论与小结 | 第43-45页 |
| 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-51页 |
| 作者简介及攻读硕士期间的科研成果 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52页 |
