| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第一章 前言 | 第12-21页 |
| 1.1 丝瓜研究概况 | 第12-14页 |
| 1.1.1 丝瓜的植物学特性 | 第12页 |
| 1.1.2 丝瓜的化学成分的研究现状 | 第12-13页 |
| 1.1.3 丝瓜药理活性的研究现状 | 第13-14页 |
| 1.1.4 丝瓜的综合利用 | 第14页 |
| 1.2 植物多糖的研究现状 | 第14-19页 |
| 1.2.1 植物多糖的提取 | 第14-15页 |
| 1.2.2 多糖的分离纯化 | 第15-17页 |
| 1.2.3 多糖结构的测定 | 第17-18页 |
| 1.2.4 多糖的生物活性 | 第18-19页 |
| 1.3 本课题研究目的、意义及主要内容 | 第19-21页 |
| 1.3.1 目的及意义 | 第19页 |
| 1.3.2 研究内容 | 第19-21页 |
| 第二章 丝瓜多糖提取工艺的优化 | 第21-33页 |
| 2.1 引言 | 第21页 |
| 2.2 材料与方法 | 第21页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第21页 |
| 2.2.2 主要仪器与设备 | 第21页 |
| 2.3 试验方法 | 第21-23页 |
| 2.3.1 丝瓜多糖制备工艺 | 第22页 |
| 2.3.2 多糖含量的测定 | 第22页 |
| 2.3.3 单因素试验 | 第22-23页 |
| 2.3.4 响应面法优化丝瓜多糖的提取工艺 | 第23页 |
| 2.4 结果与分析 | 第23-31页 |
| 2.4.1 葡萄糖标准曲线的绘制 | 第23页 |
| 2.4.2 单因素试验 | 第23-26页 |
| 2.4.3 响应面法优化多糖提取工艺 | 第26-31页 |
| 2.5 本章小结 | 第31-33页 |
| 第三章 丝瓜多糖的分离纯化 | 第33-45页 |
| 3.1 引言 | 第33页 |
| 3.2 材料与方法 | 第33-34页 |
| 3.2.1 试验试剂 | 第33-34页 |
| 3.2.2 试验仪器 | 第34页 |
| 3.3 试验方法 | 第34-37页 |
| 3.3.1 丝瓜多糖的脱蛋白工艺 | 第34-35页 |
| 3.3.2 丝瓜多糖的脱色 | 第35-36页 |
| 3.3.3 DEAE-52纤维素柱层析 | 第36-37页 |
| 3.3.4 Sephadex G-75葡聚糖凝胶柱层析 | 第37页 |
| 3.3.5 紫外光谱法测定多糖组分LCPⅡ-1的纯度 | 第37页 |
| 3.4 结果与分析 | 第37-43页 |
| 3.4.1 牛血清蛋白标准曲线的绘制及LCP中蛋白含量 | 第37-38页 |
| 3.4.2 Sevage法脱蛋白试验 | 第38-40页 |
| 3.4.3 脱色试验 | 第40-42页 |
| 3.4.4 LCPⅡ-1的DEAE-52纤维素柱层析 | 第42页 |
| 3.4.5 LCPⅡ-1的Sephadex G-75葡聚糖凝胶柱层析 | 第42-43页 |
| 3.4.6 LCPⅡ-1的紫外光谱分析 | 第43页 |
| 3.5 本章小结 | 第43-45页 |
| 第四章 丝瓜多糖性质及结构的初步研究 | 第45-53页 |
| 4.1 引言 | 第45页 |
| 4.2 材料与方法 | 第45页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第45页 |
| 4.2.2 仪器与设备 | 第45页 |
| 4.3 试验方法 | 第45-48页 |
| 4.3.1 丝瓜多糖的理化性质 | 第45-46页 |
| 4.3.2 LCPⅡ-1的红外光谱分析 | 第46页 |
| 4.3.3 LCPⅡ-1的分子量的测定 | 第46页 |
| 4.3.4 LCPⅡ-1的体外抗氧化活性的测定 | 第46-48页 |
| 4.4 结果与分析 | 第48-52页 |
| 4.4.1 LCPⅡ-1的理化性质 | 第48页 |
| 4.4.2 LCPⅡ-1的红外光谱分析 | 第48-49页 |
| 4.4.3 LCPⅡ-1的相对分子量 | 第49页 |
| 4.4.4 LCPⅡ-1的体外抗氧化能力 | 第49-52页 |
| 4.5 本章小结 | 第52-53页 |
| 第五章 结论与讨论 | 第53-55页 |
| 5.1 结论 | 第53-54页 |
| 5.2 讨论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-58页 |
| 致谢 | 第58页 |
