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RGD介导多西他赛pH敏感脂质体的合成、制备、表征及体内外抗肿瘤活性评价

中文摘要第20-24页
ABSTRACT第24-26页
符号说明第27-30页
前言第30-37页
第一章 载多西他赛pH敏感脂质体的药物含量测定第37-50页
    一、仪器与试剂第37-38页
        1. 仪器第37页
        2. 药品与试剂第37-38页
    二、实验方法第38-41页
        1. 多西他赛抗肿瘤药物体外含量的测定第38-39页
            1.1 检测波长的确定第38页
            1.2 色谱条件第38页
            1.3 标准曲线的绘制第38页
                1.3.1 贮备液的配制第38页
                1.3.2 标准曲线的建立第38页
            1.4 专属性实验第38-39页
            1.5 定量限及检测限的考察第39页
            1.6 精密度实验第39页
            1.7 回收率实验第39页
            1.8 重现性实验第39页
        2. 包封率检测方法的建立第39-41页
            2.1 方法回收率第40页
            2.2 加样回收率第40-41页
    三、实验结果第41-49页
        1. 多西他赛抗肿瘤药物体外含量的测定结果第41-47页
            1.1 检测波长的确定第41页
            1.2 色谱条件第41-42页
            1.3 标准曲线的绘制第42-43页
            1.4 专属性实验结果第43页
            1.5 定量限及检测限的测定结果第43-44页
            1.6 精密度实验结果第44-45页
            1.7 回收率实验结果第45-46页
            1.8 重现性实验结果第46-47页
        2. 包封率检测方法考察结果第47-49页
            2.1 方法回收率结果第47-48页
            2.2 加样回收率结果第48-49页
    四、本章小结第49-50页
第二章 多西他赛pH敏感脂质体的研究第50-65页
    一、仪器与试剂第50-51页
        1. 仪器第50页
        2. 药品与试剂第50-51页
    二、实验方法第51-54页
        1. 制备多西他赛pH敏感型脂质体的方法考察第51-52页
            1.1 乙醚注入法第51页
            1.2 薄膜水化法第51页
            1.3 冻融法第51-52页
        2. 单因素考察第52-53页
            2.1 药脂比第52页
            2.2 胆固醇的量第52页
            2.3 亚油酸的量第52页
            2.4 水化温度第52页
            2.5 水化时间第52页
            2.6 水化体积第52-53页
        3. 正交实验法优化制剂处方组成和制备工艺第53页
        4. 三批样品重现性第53页
        5. 多西他赛pH敏感型脂质体理化性质的表征第53-54页
            5.1 外观形态的观察第53页
            5.2 粒径分布及Zeta电势的测定第53-54页
    三、实验结果第54-63页
        1. 制备方法考察结果第54-55页
        2. 单因素考察结果第55-61页
            2.1 药脂比第55-56页
            2.2 胆固醇的量第56-57页
            2.3 油酸的量第57-58页
            2.4 水化温度第58-59页
            2.5 水化时间第59-60页
            2.6 水化体积第60-61页
        3. 正交设计实验结果第61-62页
        4. 重现性考察结果第62页
        5. 多西他赛pH敏感型脂质体性质表征结果第62-63页
            5.1 外观形态第62-63页
            5.2 粒径分布和Zeta电势测定结果第63页
    四、本章小结第63-65页
第三章 RGD介导的载多西他赛pH敏感脂质体的研究第65-87页
    一、仪器与试剂第65-66页
        1 仪器第65页
        2. 药品与试剂第65-66页
    二、实验方法第66-71页
        1. RGD-PEG-LA的合成及表征第66-69页
            1.1 RGD靶向因子的合成第66-67页
                1.1.1 树脂溶胀活化第66页
                1.1.2 天冬氨酸的连接第66页
                1.1.3 脱保护(Fmoc)第66页
                1.1.4 Kaiser检测第66-67页
                1.1.5 甘氨酸的缩合第67页
                1.1.6 精氨酸的缩合第67页
                1.1.7 切割产物第67页
            1.2 RGD-PEG的合成第67-68页
            1.3 RGD-PEG-LA的合成第68-69页
        2. 制备RGD修饰的主动靶向pH敏感型脂质体第69页
        3. RGD介导的载DTX pH敏感型脂质体理化性质的表征第69-70页
            3.1 外观形态的观察第69页
            3.2 粒径分布及Zeta电势的测定第69-70页
        4. 多西他赛体外释放实验HPLC方法的考察第70-71页
            4.1 色谱条件第70页
            4.2 不同pH缓冲液的配制第70页
            4.3 精密度实验第70页
            4.4 回收率实验第70页
            4.5 不同pH缓冲液中标准曲线的绘制第70-71页
            4.6 多帕菲(?)、DTX-PSL和RGD/DTX-PSL的体外释放第71页
                4.6.1 多帕菲(?)的体外释放第71页
                4.6.2 DTX-PSL、RGD/DTX-PSL的体外释放第71页
    三、实验结果第71-86页
        1. RGD-PEG-LA的合成及表征第71-73页
        2. 制备RGD修饰的主动靶向pH敏感型脂质体第73-74页
        3. RGD介导的载DTX pH敏感型脂质体理化性质第74-75页
            3.1 外观形态第74页
            3.2 粒径分布及Zeta电势第74-75页
        4. 多西他赛体外释放实验HPLC方法的确立第75-86页
            4.1 色谱条件第75-76页
            4.2 精密度实验第76-78页
            4.3 回收率实验第78-80页
            4.4 不同pH缓冲液中标准曲线的绘制第80-82页
            4.5 多帕菲(?)、DTX-PSL、RGD/DTX-PSL的体外释放第82-86页
                4.5.1 多帕菲(?)的体外释放结果第82-83页
                4.5.2 DTX-PSL、RGD/DTX-PSL的体外释放第83-86页
    四、本章小结第86-87页
第四章 多西他赛pH敏感脂质体体内、外抗肿瘤效果研究第87-103页
    一、仪器与试剂第87-88页
        1. 仪器第87页
        2. 药品与试剂第87页
        3. 实验动物第87-88页
    二、实验方法第88-93页
        1. 细胞培养及肿瘤移植第88-89页
            1.1 细胞复苏第88页
            1.2 细胞换液与培养第88页
            1.3 细胞计数与接种第88-89页
            1.4 细胞冻存第89页
            1.5 人乳腺癌模型的制作第89页
        2. 细胞毒性实验第89-91页
            2.1 空白脂质体对MCF-7细胞毒性实验第90页
            2.2 多帕菲(?)、载药脂质体对MCF-7细胞毒性实验第90-91页
        3. 细胞摄取实验第91-92页
            3.1 定性细胞摄取实验第91页
            3.2 定量细胞摄取实验第91-92页
        4. 体内肿瘤靶向性实验第92-93页
            4.1 NBD标记荧光切片实验第92页
            4.2 荧光组织切片实验第92-93页
        5. 抑瘤率实验第93页
    三、实验结果第93-101页
        1. 细胞毒性实验第93-97页
            1.1 空白脂质体对MCF-7细胞毒性实验第93-94页
            1.2 Duopafei(?)、载药脂质体对MCF-7细胞毒性实验第94-97页
        2. 细胞摄取实验第97-99页
        3. 荧光组织切片实验第99-100页
        4. 抑瘤率实验第100-101页
    四、本章小结第101-103页
第五章 多西他赛pH敏感脂质体的体内药动学研究第103-116页
    一、仪器与试剂第103页
        1. 仪器第103页
        2. 药品与试剂第103页
        3. 动物第103页
    二、实验方法第103-107页
        1. 血浆样品处理方法的建立第103-104页
        2. 血浆样品测定方法的建立第104-106页
            2.1 色谱条件第104页
            2.2 方法专属性实验第104页
            2.3 精密度实验第104页
            2.4 方法提取回收率第104-105页
            2.5 测定方法回收率第105页
            2.6 标准曲线的建立第105-106页
                2.6.1 溶液的配制第105页
                2.6.2 标准曲线的绘制第105-106页
        3. 多西他赛及制剂大鼠体内的药物动力学评价第106-107页
            3.1 实验方法第106页
            3.2 血药浓度的测定第106页
            3.3 药代动力学参数的计算第106-107页
    三、实验结果第107-115页
        1. 血浆样品测定方法第107-112页
            1.1 方法专属性第107-108页
            1.2 精密度结果第108-109页
            1.3 方法提取回收率第109-110页
            1.4 测定方法回收率第110-111页
            1.5 标准曲线绘制结果第111-112页
        2. 多西他赛及制剂大鼠体内的药物动力学评价第112-115页
            2.1 血药浓度测定结果第112-113页
            2.2 药代动力学参数第113-115页
    四、本章小结第115-116页
总结与展望第116-119页
参考文献第119-127页
致谢第127-128页
攻读学位期间发表的学术论文第128-129页
附件第129页

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