| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-15页 |
| 英文缩略语一览表 | 第15-22页 |
| 第一章 前言 | 第22-39页 |
| ·氧基黄酮和多羟基甲氧基黄酮的分离与合成 | 第22-23页 |
| ·氧基黄酮和多羟基甲氧基黄酮的生物活性研究 | 第23-30页 |
| ·抗癌活性 | 第24-27页 |
| ·抗炎活性 | 第27-29页 |
| ·抗动脉硬化活性 | 第29-30页 |
| ·甲氧基黄酮和多羟基甲氧基黄酮的体内代谢研究 | 第30-34页 |
| ·代谢研究 | 第30-31页 |
| ·生物利用度研究 | 第31-34页 |
| ·结论 | 第34-35页 |
| 参考文献 | 第35-39页 |
| 第二章 5-羟基多甲氧基黄酮对结肠癌细胞的抑制作用 | 第39-60页 |
| ·材料与试剂 | 第39-41页 |
| ·仪器与试剂 | 第39-40页 |
| ·PMFs和羟基化PMFs的分离制各 | 第40-41页 |
| ·细胞培养 | 第41页 |
| ·试验方法 | 第41-46页 |
| ·MTT法检测细胞的生存能力 | 第41-42页 |
| ·细胞周期分析 | 第42-43页 |
| ·检测细胞凋亡 | 第43页 |
| ·提取细胞总蛋白 | 第43-46页 |
| ·实验结果分析 | 第46-55页 |
| ·5-羟基PMFs比它们的母体化合物有更强的抑制结肠癌细胞生长作用 | 第46-48页 |
| ·5-羟基PMFs对结肠癌细胞细胞周期的影响 | 第48-50页 |
| ·5-羟基PMFs可诱导HCTll6和HT29细胞产生细胞凋亡 | 第50-52页 |
| ·5-羟基PMFs能显著地改变调节细胞周期和细胞凋亡的蛋白含量 | 第52-55页 |
| ·本章小结与讨论 | 第55-58页 |
| 参考文献 | 第58-60页 |
| 第三章 5一羟基多甲氧基黄酮以p53,Bax和p21依赖方式抑制结肠癌细胞生长 | 第60-77页 |
| ·材料与试剂 | 第60-61页 |
| ·羟基化PMFs的分离制备 | 第60-61页 |
| ·细胞培养 | 第61页 |
| ·仪器与试剂 | 第61页 |
| ·试验方法 | 第61-63页 |
| ·细胞周期分析 | 第61-62页 |
| ·检测细胞凋亡 | 第62页 |
| ·提取细胞总蛋白 | 第62-63页 |
| ·实验结果分析 | 第63-74页 |
| ·5HHMF和5HTMF以p53依赖性机制诱导细胞凋亡 | 第63-68页 |
| ·5HHMF和5HTMF通过Bax依赖性机制诱导细胞凋亡 | 第68-71页 |
| ·5HPMF、5HHMF和5HTMF通过p53和p2l依赖性机制诱导细胞周期滞留 | 第71-74页 |
| ·本章小结与讨论 | 第74-76页 |
| 参考文献 | 第76-77页 |
| 第四章 5HHMF对结肠癌细胞的抑制作用 | 第77-91页 |
| ·材料与试剂 | 第77-78页 |
| ·5HHMF的分离制备 | 第77页 |
| ·细胞培养 | 第77页 |
| ·仪器与试剂 | 第77-78页 |
| ·实验方法 | 第78-80页 |
| ·集落形成实验 | 第78页 |
| ·NAC对 5HHMF诱导的细胞生长抑制的抵抗作用 | 第78-79页 |
| ·提取细胞膜 | 第79页 |
| ·提取细胞浆和细胞核 | 第79页 |
| ·提取细胞总蛋白 | 第79-80页 |
| ·血管生成实验 | 第80页 |
| ·免疫印迹分析 | 第80页 |
| ·实验结果分析 | 第80-87页 |
| ·5HHMFq‘抑制结肠癌细胞的集落形成能力 | 第80-83页 |
| ·NAC对5HHMF诱导的结肠癌细胞生长抑制的影响 | 第83-84页 |
| ·5HHMF可降低B-catenin/E-cadherln比例 | 第84-85页 |
| ·5HHMF可抑制EGFR磷酸化及降低K-RAS含量 | 第85-86页 |
| ·5HHMF可抑制血管生成 | 第86-87页 |
| ·本章小结与讨论 | 第87-89页 |
| 参考文献 | 第89-91页 |
| 第五章 5HPMF和5HTMF体内抗结肠癌活性和药代动力学研究 | 第91-106页 |
| ·5HPMF和5HTMF抗大鼠结肠癌研究 | 第91-93页 |
| ·材料和仪器 | 第91页 |
| ·实验方法 | 第91-92页 |
| ·大鼠结肠癌模型的建立 | 第91-92页 |
| ·ACF的识别 | 第92页 |
| ·ACF的组织学分析 | 第92页 |
| ·实验结果与分析 | 第92-93页 |
| ·常规观察 | 第92-93页 |
| ·5HPMF和5HTMF可抑制AcF的形成 | 第93页 |
| ·5HPMF和5HTMF的药代动力学研究 | 第93-104页 |
| ·材料和仪器 | 第93-94页 |
| ·色谱普条件 | 第94页 |
| ·5HPMr和5HTMF的入血成分研究 | 第94-99页 |
| ·给药方案与样品采集 | 第94页 |
| ·样品的预处理 | 第94-95页 |
| ·HPLc分析 | 第95页 |
| ·方法学验证 | 第95-96页 |
| ·结果与讨论 | 第96-99页 |
| ·5HPMF和5HTMF大鼠体内的排泄研究 | 第99-104页 |
| ·给药方案与样品采集 | 第99页 |
| ·样品的预处理 | 第99-100页 |
| ·HPLc分析 | 第100页 |
| ·方法学验证 | 第100-101页 |
| ·结果与讨论 | 第101-104页 |
| ·本章小结与讨论 | 第104-105页 |
| 参考文献 | 第105-106页 |
| 第六章 5HPMF和阿托伐他汀联合使用对结肠癌细胞的协同性抑制作用 | 第106-129页 |
| ·材料与试剂 | 第106-108页 |
| ·5HPMF的分离制备 | 第106页 |
| ·细胞培养 | 第106-107页 |
| ·仪器与试剂 | 第107-108页 |
| ·实验方法 | 第108-111页 |
| ·MTT、去检测细胞的生存能力 | 第108页 |
| ·协同效应分析 | 第108-109页 |
| ·细胞周期分析 | 第109页 |
| ·细胞凋亡分析 | 第109-110页 |
| ·细胞总蛋白的提取 | 第110页 |
| ·细胞膜的提取 | 第110-111页 |
| ·免疫印迹分析 | 第111页 |
| ·实验结果与分析 | 第111-123页 |
| ·5HPMF和阿托伐他汀联合使用可协同性抑制结肠癌细胞生长 | 第111-115页 |
| ·5HPMF和阿托伐他汀联合使用可协同性诱导结肠癌细胞周期滞留 | 第115-119页 |
| ·5HPMF和阿托伐他汀联合使用可协同性诱导结肠癌细胞凋亡 | 第119-123页 |
| ·藻酸双酯钠与川陈皮素或5羟基川陈皮素的协同性抗结肠癌作用 | 第123-126页 |
| ·本章小结与讨论 | 第126-127页 |
| 参考文献 | 第127-129页 |
| 第七章 总结和创新点 | 第129-132页 |
| ·总结与讨论 | 第129-130页 |
| ·论文的主要结论 | 第130-131页 |
| ·论文的创新点 | 第131-132页 |
| 发表论文 | 第132-133页 |
| 会议报告及摘要 | 第133-136页 |
| 致谢 | 第136页 |
