| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 1 绪论 | 第14-20页 |
| 1.1 白首乌的研究进展 | 第14-16页 |
| 1.1.1 白首乌主要成分 | 第14-15页 |
| 1.1.2 白首乌的功效 | 第15-16页 |
| 1.2 白首乌蛋白的研究进展 | 第16-17页 |
| 1.3 白首乌多糖的研究进展 | 第17-18页 |
| 1.3.1 白首乌多糖提取方法的研究进展 | 第17页 |
| 1.3.2 白首乌多糖功能活性的研究进展 | 第17-18页 |
| 1.4 研究目的意义及主要研究内容 | 第18-20页 |
| 1.4.1 研究目的与意义 | 第18-19页 |
| 1.4.2 主要研究内容 | 第19-20页 |
| 2 白首乌蛋白的提取和功能性质研究 | 第20-33页 |
| 2.1 引言 | 第20页 |
| 2.2 实验材料、试剂和设备 | 第20-21页 |
| 2.2.1 实验材料与试剂 | 第20-21页 |
| 2.2.2 实验仪器与设备 | 第21页 |
| 2.3 实验方法 | 第21-24页 |
| 2.3.1 制备脱脂白首乌粉末 | 第21页 |
| 2.3.2 样品中蛋白含量测定 | 第21页 |
| 2.3.3 白首乌蛋白的提取 | 第21-22页 |
| 2.3.4 白首乌蛋白的电泳分析 | 第22页 |
| 2.3.5 液相色谱串联质谱(LC-MS/MS)分析 | 第22页 |
| 2.3.6 氨基酸组成 | 第22-23页 |
| 2.3.7 加工特性的测定 | 第23-24页 |
| 2.4 统计分析 | 第24页 |
| 2.5 结果与讨论 | 第24-32页 |
| 2.5.1 白首乌粉中蛋白质含量的测定结果 | 第24页 |
| 2.5.2 不同提取溶剂对白首乌蛋白得率的影响 | 第24-25页 |
| 2.5.3 白首乌蛋白的电泳分析 | 第25-26页 |
| 2.5.4 液相色谱串联质谱(LC-MS/MS)分析 | 第26-27页 |
| 2.5.5 氨基酸组成 | 第27页 |
| 2.5.6 白首乌蛋白的加工功能特性 | 第27-32页 |
| 2.6 本章小结 | 第32-33页 |
| 3 响应面法优化白首乌多糖的提取工艺 | 第33-43页 |
| 3.1 引言 | 第33页 |
| 3.2 实验材料、试剂和仪器设备 | 第33-34页 |
| 3.2.1 实验材料与试剂 | 第33-34页 |
| 3.2.2 实验仪器与设备 | 第34页 |
| 3.3 实验方法 | 第34-35页 |
| 3.3.1 原料的预处理 | 第34页 |
| 3.3.2 白首乌多糖提取 | 第34页 |
| 3.3.3 单因素实验 | 第34页 |
| 3.3.4 多糖含量的测定 | 第34-35页 |
| 3.3.5 多糖提取的中心组合实验 | 第35页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第35-41页 |
| 3.4.1 葡萄糖标准曲线 | 第35-36页 |
| 3.4.2 单因素结果分析 | 第36-37页 |
| 3.4.3 响应面试验结果 | 第37-38页 |
| 3.4.4 回归模型有效性及显著性分析 | 第38-39页 |
| 3.4.5 响应面分析 | 第39-41页 |
| 3.4.6 最佳条件优化及验证试验 | 第41页 |
| 3.5 本章小结 | 第41-43页 |
| 4 白首乌多糖的纯化及表征 | 第43-52页 |
| 4.1 引言 | 第43页 |
| 4.2 实验材料、试剂和设备 | 第43-44页 |
| 4.2.1 实验材料与试剂 | 第43-44页 |
| 4.2.2 实验仪器与设备 | 第44页 |
| 4.3 实验方法 | 第44-46页 |
| 4.3.1 白首乌多糖的制备 | 第44页 |
| 4.3.2 紫外-可见全波长扫描 | 第44页 |
| 4.3.3 白首乌多糖DEAE-Sepharo Fast Flow分离纯化 | 第44页 |
| 4.3.4 白首乌多糖的葡聚糖凝胶分离纯化 | 第44-45页 |
| 4.3.5 白首乌多糖的纯度鉴定及分子量的测定 | 第45页 |
| 4.3.6 完全酸水解及液相色谱分析单糖组成 | 第45-46页 |
| 4.3.7 统计分析 | 第46页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第46-51页 |
| 4.4.1 紫外-可见全波长扫描 | 第46-47页 |
| 4.4.2 白首乌多糖DEAE-Sepharo Fast Flow分离纯化 | 第47页 |
| 4.4.3 白首乌多糖初步分离组分葡聚糖凝胶色谱法分离纯化 | 第47-48页 |
| 4.4.4 多糖组分的纯度鉴定及分子量的测定 | 第48-49页 |
| 4.4.5 白首乌多糖的单糖组成分析 | 第49-51页 |
| 4.5 本章小结 | 第51-52页 |
| 5 白首乌多糖的体外抗氧化性 | 第52-58页 |
| 5.1 引言 | 第52页 |
| 5.2 实验材料、试剂和仪器设备 | 第52-53页 |
| 5.2.1 实验材料与试剂 | 第52页 |
| 5.2.2 实验仪器与设备 | 第52-53页 |
| 5.3 实验方法 | 第53-54页 |
| 5.3.1 样品的制备 | 第53页 |
| 5.3.2 对DPPH自由基清除率的测定 | 第53页 |
| 5.3.3 ORAC法(Oxygen Radical Absorbance Capacity) | 第53页 |
| 5.3.4 对超氧阴离子清除能力测定 | 第53-54页 |
| 5.3.5 对ABTS+·清除能力的测定 | 第54页 |
| 5.4 统计分析 | 第54页 |
| 5.5 结果与讨论 | 第54-57页 |
| 5.5.1 对DPPH自由基清除率的测定 | 第54-55页 |
| 5.5.2 ORAC法 | 第55-56页 |
| 5.5.3 对超氧阴离子清除能力测定 | 第56-57页 |
| 5.5.4 对ABTS+·清除能力的测定 | 第57页 |
| 5.6 本章小结 | 第57-58页 |
| 6 白首乌多对HUVEC细胞的保护作用 | 第58-64页 |
| 6.1 引言 | 第58页 |
| 6.2 实验材料、试剂和仪器设备 | 第58-59页 |
| 6.2.1 实验材料与试剂 | 第58页 |
| 6.2.2 实验仪器与设备 | 第58-59页 |
| 6.3 实验方法 | 第59-60页 |
| 6.3.1 人脐静脉血管内皮细胞的培养研究 | 第59页 |
| 6.3.2 白首乌多糖对TNF-α诱导人脐静脉血管内皮细胞活力的影响 | 第59页 |
| 6.3.3 白首乌多糖对TNF-α诱导静脉上皮细胞产生ROS的影响 | 第59-60页 |
| 6.3.4 白首乌多糖对TNF-α诱导静脉上皮细胞产生SOD的影响 | 第60页 |
| 6.3.5 数据处理 | 第60页 |
| 6.4 结果与分析 | 第60-63页 |
| 6.4.1 白首乌多糖对TNF-α诱导人脐静脉血管内皮细胞活力的影响 | 第60-61页 |
| 6.4.2 白首乌多糖对TNF-α诱导静脉上皮细胞产生ROS的影响 | 第61-62页 |
| 6.4.3 白首乌多糖对TNF-α诱导静脉上皮细胞产生SOD的影响 | 第62-63页 |
| 6.5 本章小结 | 第63-64页 |
| 结论 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-71页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72页 |
