| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 引言 | 第9-18页 |
| 1. OFPS研究进展 | 第9-13页 |
| 1.1 OVATE基因的发现及蛋白结构 | 第9-10页 |
| 1.2 拟南芥OFP家族基因的研究进展 | 第10-13页 |
| 2. 拟南芥ER基因家族研究进展 | 第13-17页 |
| 2.1 ER基因的发现及其蛋白结构特点 | 第13页 |
| 2.2 ER基因家族研究进展 | 第13-17页 |
| 3. 本论文的研究目的及意义 | 第17-18页 |
| 材料与方法 | 第18-33页 |
| 1. 实验材料 | 第18-23页 |
| 1.1 植物材料 | 第18页 |
| 1.2 菌株及载体 | 第18页 |
| 1.3 试剂与试剂盒 | 第18-20页 |
| 1.4 仪器与设备 | 第20页 |
| 1.5 培养基及主要缓冲液的配制 | 第20-23页 |
| 1.6 引物设计与合成 | 第23页 |
| 2. 实验方法 | 第23-33页 |
| 2.1 拟南芥的培养 | 第23-24页 |
| 2.2 拟南芥基因组DNA的提取 | 第24页 |
| 2.3 拟南芥的RNA提取反转录及PCR | 第24-25页 |
| 2.4 转基因植物构建及筛选 | 第25-26页 |
| 2.5 载体构建 | 第26-29页 |
| 2.6 质粒DNA提取 | 第29-30页 |
| 2.7 突变体构建及筛选 | 第30-31页 |
| 2.8 酵母双杂交 | 第31页 |
| 2.9 拟南芥叶肉细胞原生质体瞬时转染 | 第31-32页 |
| 2.10 GUS组织染色 | 第32-33页 |
| 结果与分析 | 第33-45页 |
| 1. AtOFP16是转录抑制子 | 第33-34页 |
| 1.1 AtOFP16的亚细胞定位情况 | 第33页 |
| 1.2 AtOFP16具有转录抑制活性 | 第33-34页 |
| 2. AtOFP16是主动抑制子 | 第34-36页 |
| 2.1 强激活子VP不能够转变AtOFP16是转录活性 | 第34-35页 |
| 2.2 在植物体中强激活子VP影响AtOFP16功能 | 第35-36页 |
| 3. 在植物体中GR影响AtOFP16功能 | 第36-38页 |
| 3.1 HA-AtOFP16-GR过表达植物构建及筛选 | 第36-37页 |
| 3.2 DEX处理不影响AtOFP16-GR转基因植物表型 | 第37-38页 |
| 4. ER及AtOFP16在拟南芥中的表达模式分析 | 第38-39页 |
| 4.1 pUC19ERp-GUS、pUC19 AtOFP16p-GUS表达载体的构建 | 第38页 |
| 4.2 AtOFP6和ER在拟南芥中的表达模式 | 第38-39页 |
| 5. 过表达ER基因使过表达AtOFP16表型恢复 | 第39-40页 |
| 5.1 过表达AtOFP16基础上过表达ER转基因植物的构建及筛选 | 第39页 |
| 5.2 过表达AtOFP16基础上过表达ER转基因植物的表型 | 第39-40页 |
| 6. AtOFP16基因敲除对er突变体表型的影响 | 第40-42页 |
| 6.1 er与ofp16双突变体构建 | 第40-41页 |
| 6.2 er突变体背景过表达HA-AtOFP16-VP转基因植物 | 第41-42页 |
| 7. ER信号途径下游MPK3与AtOFP16相互作用 | 第42-45页 |
| 7.1 在酵母中MPK3能与AtOFP16互作 | 第42-43页 |
| 7.2 在拟南芥原生质体中MPK3能与AtOFP16互作 | 第43-45页 |
| 讨论 | 第45-47页 |
| 1. 转基因植物中AtOFP16后连入标签可能影响其蛋白稳定性 | 第45页 |
| 2. AtOFP16可能通过与MPK3互作调控荚果形态 | 第45-46页 |
| 3. 拟南芥OFPS第三亚家族突变体表型 | 第46-47页 |
| 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-54页 |
| 附录 | 第54-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 在学期间学术成果情况 | 第57页 |
