| 中文摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 缩略语/符号说明 | 第8-10页 |
| 前言 | 第10-13页 |
| 研究现状、成果 | 第10-13页 |
| 研究目的、方法 | 第13页 |
| 1.对象和方法 | 第13-20页 |
| 1.1 实验动物 | 第13页 |
| 1.2 主要仪器设备及耗材 | 第13-14页 |
| 1.3 实验试剂 | 第14页 |
| 1.4 主要试剂的配制 | 第14-15页 |
| 1.5 小鼠液压打击模型的诱导 | 第15页 |
| 1.6 DRα1-MOG3555的克隆、生产和提纯 | 第15页 |
| 1.7 DRα1-MOG3555的给药 | 第15-16页 |
| 1.8 神经功能的评估 | 第16页 |
| 1.8.1 mNSS评分 | 第16页 |
| 1.8.2 转角实验 | 第16页 |
| 1.9 病灶大小的测量 | 第16-17页 |
| 1.10 脑组织、脾脏和血的流式细胞检测 | 第17-19页 |
| 1.10.1 外周血单个核细胞的提取 | 第18页 |
| 1.10.2 脑部单个核细胞的提取 | 第18-19页 |
| 1.10.3 脾脏单个核细胞的提取 | 第19页 |
| 1.10.4 细胞的荧光染色 | 第19页 |
| 1.10.5 细胞的上机检测 | 第19页 |
| 1.10.6 流式数据分析 | 第19页 |
| 1.11 数据分析 | 第19-20页 |
| 2. 结果 | 第20-26页 |
| 2.1 DRα1-MOG-35-55治疗能够减轻FPI模型小鼠的神经功能缺损，减小病灶体积 | 第20页 |
| 2.2 DRα1-MOG3555能够减少脑内CD11b+细胞的浸润和减少CD74的表达 | 第20-21页 |
| 2.3 DRα1-MOG3555治疗对外周CD11b+细胞的影响 | 第21-26页 |
| 3. 讨论 | 第26-30页 |
| 结论 | 第30-31页 |
| 参考文献 | 第31-39页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第39-40页 |
| 综述 创伤性脑损伤后的小胶质/巨噬细胞的作用 | 第40-51页 |
| 综述参考文献 | 第45-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 个人简历 | 第52页 |
