中文摘要 | 第12-16页 |
ABSTRACT | 第16-20页 |
第一章 引言 | 第21-25页 |
1.1 立题背景和意义 | 第21-22页 |
1.2 本课题研究内容、技术流程图及创新点 | 第22-25页 |
1.2.1 本课题研究内容和技术流程图 | 第22-23页 |
1.2.2 本课题的主要创新点 | 第23-25页 |
第二章 文献综述 | 第25-39页 |
2.1 动物模型在衰老研究中的应用 | 第25-30页 |
2.1.1 衰老动物模型的应用现状 | 第25-26页 |
2.1.2 衰老动物模型在抗衰老药物筛选中的应用 | 第26-30页 |
2.2 代谢组学技术在衰老相关研究中的应用 | 第30-31页 |
2.2.1 代谢组学研究的应用现状 | 第30页 |
2.2.2 代谢组学在衰老研究中的应用 | 第30-31页 |
2.3 衰老相关性别差异研究 | 第31-33页 |
2.3.1 多种疾病相关性别差异 | 第31-32页 |
2.3.2 衰老相关性别差异 | 第32-33页 |
2.4 抗衰老药物 | 第33-35页 |
2.5 黄芩抗衰老药理活性研究 | 第35-37页 |
2.5.1 黄芩抗衰老研究现状 | 第36-37页 |
2.5.2 黄芩抗衰老药理活性研究进展 | 第37页 |
2.6 总结与展望 | 第37-39页 |
第三章 基于 ~1H-NMR技术果蝇生长过程动态代谢组学研究 | 第39-57页 |
3.1 引言 | 第39页 |
3.2 材料和仪器 | 第39-40页 |
3.3 实验方法 | 第40-42页 |
3.3.1 果蝇培养基的制备 | 第40页 |
3.3.2 果蝇代谢组学实验设计 | 第40页 |
3.3.3 果蝇样品的收集与处理 | 第40页 |
3.3.4 果蝇组织前处理溶剂提取方法摸索 | 第40-41页 |
3.3.5 ~1H-NMR果蝇组织样品测定 | 第41页 |
3.3.6 ~1H-NMR图谱处理 | 第41页 |
3.3.7 统计学分析 | 第41-42页 |
3.4 结果和讨论 | 第42-56页 |
3.4.1 果蝇组织前处理溶剂提取方法摸索 | 第42-46页 |
3.4.2 NMR图谱指认 | 第46-47页 |
3.4.3 果蝇生长过程代谢轮廓动态变化研究 | 第47-49页 |
3.4.4 果蝇生长过程代谢物动态变化研究 | 第49-53页 |
3.4.5 与果蝇衰老相关的代谢通路富集 | 第53-56页 |
3.5 本章小结 | 第56-57页 |
第四章 基于 ~1H-NMR代谢组学果蝇衰老过程性别差异研究 | 第57-66页 |
4.1 引言 | 第57页 |
4.2 材料和仪器 | 第57页 |
4.3 实验方法 | 第57-58页 |
4.3.1 雌雄果蝇性别差异~1H-NMR代谢组学研究方法设计 | 第57页 |
4.3.2 雌雄果蝇性别差异 ~1H-NMR代谢组学研究具体操作步骤 | 第57-58页 |
4.3.3 统计学分析 | 第58页 |
4.4 结果与讨论 | 第58-64页 |
4.4.1 NMR图谱 | 第58页 |
4.4.2 多元统计分析 | 第58-63页 |
4.4.3 与衰老过程性别差异相关代谢通路的富集 | 第63-64页 |
4.5 本章小结 | 第64-66页 |
第五章 基于 ~1H-NMR代谢组学的黄芩抗衰老活性评价 | 第66-77页 |
5.1 引言 | 第66页 |
5.2 材料和仪器 | 第66页 |
5.3 实验方法 | 第66-67页 |
5.3.1 黄芩提取物的制备 | 第66页 |
5.3.2 果蝇寿命实验 | 第66-67页 |
5.3.3 果蝇代谢组学实验 | 第67页 |
5.3.4 果蝇代谢组学研究具体操作步骤 | 第67页 |
5.3.5 统计学分析 | 第67页 |
5.4 结果与讨论 | 第67-75页 |
5.4.1 果蝇生存寿命分析 | 第67-69页 |
5.4.2 NMR图谱 | 第69页 |
5.4.3 NMR数据多元统计分析 | 第69-72页 |
5.4.4 代谢途径分析 | 第72-73页 |
5.4.5 代谢物生物学意义阐释 | 第73-75页 |
5.5 本章小结 | 第75-77页 |
第六章 总结与展望 | 第77-81页 |
6.1 研究工作总结 | 第77-78页 |
6.2 展望 | 第78-79页 |
6.3 学习心得 | 第79-81页 |
参考文献 | 第81-93页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第93-95页 |
致谢 | 第95-96页 |
个人简况及联系方式 | 第96-97页 |