| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 英文缩略词表 | 第11-12页 |
| 一 引言 | 第12-15页 |
| 二 实验材料 | 第15-20页 |
| 2.1 实验仪器及耗材 | 第15-16页 |
| 2.2 主要试剂及实验材料 | 第16-17页 |
| 2.3 主要试剂的配制 | 第17-20页 |
| 2.3.1 培养基的配制 | 第17页 |
| 2.3.2 胰蛋白酶的配制 | 第17页 |
| 2.3.3 PBS的配制 | 第17页 |
| 2.3.4 双抗的配制 | 第17-18页 |
| 2.3.5 0.1%BSA饥饿培养基的配制 | 第18页 |
| 2.3.6 DEPC水的配制 | 第18页 |
| 2.3.7 生长因子(Growth Factor)的配制 | 第18页 |
| 2.3.8 0.1%明胶的配制 | 第18-19页 |
| 2.3.9 染色液：0.1%的结晶紫的配制 | 第19-20页 |
| 三 实验方法 | 第20-32页 |
| 3.1 样品采集 | 第20-23页 |
| 3.1.1 采样地点与采样时间 | 第20-21页 |
| 3.1.2 采样仪 | 第21页 |
| 3.1.3 采样过程的质量保证与质量控制 | 第21-22页 |
| 3.1.4 有机组分提取 | 第22-23页 |
| 3.2 人脐静脉内皮细胞HUVEC的培养 | 第23-24页 |
| 3.2.1 HUVEC细胞的复苏 | 第23页 |
| 3.2.2 HUVEC细胞的传代 | 第23-24页 |
| 3.2.3 HUVEC细胞的冻存 | 第24页 |
| 3.3 HUVEC细胞标准曲线的制作 | 第24-25页 |
| 3.4 HUVEC细胞生长曲线的制作 | 第25页 |
| 3.5 HUVEC细胞存活率测定 | 第25-26页 |
| 3.6 Apo-ONE(?)Homogeneous Caspase-3/7试剂盒检测不同浓度PM_(2.5)有机组分诱导的人脐静脉内皮细胞Caspase酶活性的影响 | 第26-27页 |
| 3.7 Western Blot | 第27-31页 |
| 3.7.1 试剂和仪器 | 第27页 |
| 3.7.2 溶液的配制 | 第27-28页 |
| 3.7.3 Western Blot步骤 | 第28-31页 |
| 3.8 HUVEC细胞的迁移 | 第31-32页 |
| 四 结果与分析 | 第32-43页 |
| 4.1 采样情况 | 第32-33页 |
| 4.2 人脐静脉内皮细胞HUVEC细胞的特征 | 第33-36页 |
| 4.2.1 人脐静脉内皮细胞HUVEC细胞的培养 | 第33-34页 |
| 4.2.2 人脐静脉内皮细胞HUVEC细胞的标准曲线 | 第34-35页 |
| 4.2.3 人脐静脉内皮细胞HUVEC细胞的生长曲线 | 第35-36页 |
| 4.3 PM_(2.5)有机组分对HUVEC细胞存活率的影响 | 第36-39页 |
| 4.4 PM_(2.5)有机组分对HUVEC细胞的迁移功能的影响 | 第39-40页 |
| 4.5 PM_(2.5)有机组分对HUVEC细胞凋亡作用的影响及其分子机理 | 第40-41页 |
| 4.5.1 PM_(2.5)有机组分通过Caspase通路促进HUVEC细胞凋亡 | 第40页 |
| 4.5.2 PM_(2.5)有机组分通过AKT通路抑制HUVEC细胞增殖 | 第40-41页 |
| 4.6 VE对PM_(2.5)诱导的HUVEC细胞损伤有预防作用 | 第41-43页 |
| 五 讨论 | 第43-45页 |
| 六 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-49页 |
| 文献综述 空气细颗粒物对心血管疾病的影响基本机制 | 第49-56页 |
| 参考文献 | 第53-56页 |
| 致谢 | 第56页 |
