| 摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 英文缩略词表 | 第12-13页 |
| 第1章 华卟啉钠在光动力疗法和声动力疗法中的研究进展 | 第13-21页 |
| 1.1 华卟啉钠的特性及理化属性 | 第13-14页 |
| 1.2 华卟啉钠的荧光强度及单线态氧产率 | 第14页 |
| 1.3 华卟啉钠在细胞及其在肿瘤组织的富集 | 第14-15页 |
| 1.4 华卟啉钠的安全性 | 第15-16页 |
| 1.5 华卟啉钠与肿瘤治疗 | 第16-18页 |
| 1.5.1 华卟啉钠在光动力疗法中的应用 | 第16-17页 |
| 1.5.2 华卟啉钠在声动力疗法中的应用 | 第17-18页 |
| 1.5.3 华卟啉钠在声光联合疗法中的应用 | 第18页 |
| 1.6 华卟啉钠与肿瘤诊断 | 第18-21页 |
| 第2章 研究论文的立论依据、内容和目的意义 | 第21-23页 |
| 第3章 DVDMS对肿瘤细胞和正常细胞的杀伤效应研究 | 第23-31页 |
| 3.1 材料和仪器 | 第23-24页 |
| 3.1.1 细胞来源与细胞培养 | 第23页 |
| 3.1.2 试剂与配制 | 第23-24页 |
| 3.1.3 仪器设备 | 第24页 |
| 3.2 实验方法 | 第24-26页 |
| 3.2.1 给药及分组 | 第24-25页 |
| 3.2.2 正常小鼠脾淋巴细胞的分离 | 第25页 |
| 3.2.3 流式细胞仪检测DVDMS在S180细胞中的富集特性 | 第25页 |
| 3.2.4 精诺真活体成像检测肿瘤细胞和正常细胞对四种卟啉类敏化剂的摄取情况 | 第25-26页 |
| 3.2.5 MTT法检测DVDMS对肿瘤细胞和正常细胞的细胞毒作用 | 第26页 |
| 3.2.6 数据分析 | 第26页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第26-31页 |
| 3.3.1 DVDMS在S180细胞中的富集特性 | 第26-27页 |
| 3.3.2 肿瘤细胞和正常细胞对四种卟啉类敏化剂的摄取情况 | 第27-28页 |
| 3.3.3 DVDMS对肿瘤细胞和正常细胞的细胞毒作用 | 第28-29页 |
| 3.3.4 讨论 | 第29-31页 |
| 第4章 DVDMS-SDT对小鼠S180细胞杀伤作用及血管形成效应研究 | 第31-39页 |
| 4.1 材料和仪器 | 第31-32页 |
| 4.1.1 细胞来源与细胞培养 | 第31页 |
| 4.1.2 试剂与配制 | 第31页 |
| 4.1.3 仪器设备 | 第31-32页 |
| 4.1.4 超声装置 | 第32页 |
| 4.2 实验方法 | 第32-34页 |
| 4.2.1 给药、超声及分组 | 第32页 |
| 4.2.2 MTT法检测DVDMS-SDT对肿瘤细胞和正常细胞的杀伤作用 | 第32-33页 |
| 4.2.3 克隆形成实验检测DVDMS-SDT对小鼠S180细胞的增殖抑制作用 | 第33页 |
| 4.2.4 流式细胞仪结合AnnexinV-PE/7-AAD检测S180细胞凋亡 | 第33页 |
| 4.2.5 HUVECs体外小管形成实验 | 第33-34页 |
| 4.2.6 数据分析 | 第34页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第34-39页 |
| 4.3.1 DVDMS-SDT对肿瘤细胞和正常细胞的杀伤作用 | 第34-35页 |
| 4.3.2 克隆形成能力检测 | 第35页 |
| 4.3.3 流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第35-36页 |
| 4.3.4 DVDMS-SDT对HUVECs体外小管形成能力的影响 | 第36-37页 |
| 4.3.5 讨论 | 第37-39页 |
| 第5章 DVDMS在S180荷瘤小鼠体内的代谢研究 | 第39-45页 |
| 5.1 材料和仪器 | 第39页 |
| 5.1.1 实验材料与试剂 | 第39页 |
| 5.1.2 主要仪器 | 第39页 |
| 5.2 实验方法 | 第39-40页 |
| 5.2.1 肿瘤组织及小鼠主要脏器取材、称量 | 第39-40页 |
| 5.2.2 DVDMS在S180移植瘤小鼠肿瘤内的富集变化 | 第40页 |
| 5.2.3 DVDMS在S180移植瘤小鼠各组织中的分布 | 第40页 |
| 5.2.4 统计学分析 | 第40页 |
| 5.3 实验结果 | 第40-45页 |
| 5.3.1 DVDMS在S180移植瘤小鼠肿瘤内的富集变化 | 第40-42页 |
| 5.3.2 DVDMS在S180移植瘤小鼠各组织中的分布 | 第42页 |
| 5.3.3 讨论 | 第42-45页 |
| 第6章 DVDMS介导的多次超声治疗对S180移植瘤的杀伤作用研究 | 第45-61页 |
| 6.1 材料和仪器 | 第45-46页 |
| 6.1.1 实验动物及瘤株 | 第45页 |
| 6.1.2 主要试剂 | 第45页 |
| 6.1.3 主要仪器 | 第45-46页 |
| 6.1.4 超声装置 | 第46页 |
| 6.2 实验方法 | 第46-50页 |
| 6.2.1 动物模型的建立、实验分组及处理 | 第46-47页 |
| 6.2.2 实验取材及指标检测 | 第47-48页 |
| 6.2.3 肿瘤组织与各器官组织形态学观察 | 第48页 |
| 6.2.4 TUNEL assay | 第48-49页 |
| 6.2.5 免疫组织化学法检测肿瘤组织增殖细胞核抗原蛋白PCNA、血管内皮生长因子VEGF和CD34的表达变化 | 第49页 |
| 6.2.6 数据分析 | 第49-50页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第50-59页 |
| 6.3.1 DVDMS介导的多次超声对小鼠肿瘤生长的影响 | 第50-51页 |
| 6.3.2 DVDMS介导的多次超声对小鼠瘤重的影响 | 第51-52页 |
| 6.3.3 DVDMS介导的多次超声杀伤S180肿瘤组织的显微结构观察 | 第52-53页 |
| 6.3.4 DVDMS介导的多次声动力治疗对S180肿瘤凋亡的检测 | 第53-54页 |
| 6.3.5 DVDMS介导的多次声动力治疗对PCNA表达水平的影响 | 第54-55页 |
| 6.3.6 DVDMS介导的多次声动力治疗对CD34表达水平的影响 | 第55页 |
| 6.3.7 DVDMS介导的多次声动力治疗对VEGF表达水平的影响 | 第55-56页 |
| 6.3.8 DVDMS介导的多次声动力治疗模式的安全化评估 | 第56-59页 |
| 6.4 讨论 | 第59-61页 |
| 第7章 总结 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-71页 |
| 致谢 | 第71-73页 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第73页 |
