| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-10页 |
| 第一章 绪论 | 第10-19页 |
| ·骨关节炎概述 | 第10页 |
| ·细胞凋亡 | 第10-16页 |
| ·前言 | 第10-12页 |
| ·线粒体与细胞凋亡 | 第12页 |
| ·Caspase 蛋白与细胞凋亡 | 第12-13页 |
| ·BCL-2 家族蛋白与细胞凋亡 | 第13页 |
| ·细胞凋亡通路概述 | 第13-16页 |
| ·ROS 诱导软骨细胞凋亡的研究现状 | 第16-18页 |
| ·ROS 与细胞凋亡 | 第16-17页 |
| ·ROS 诱导软骨细胞凋亡的研究现状 | 第17-18页 |
| ·激光扫描共聚焦显微镜（Lase Scanning Confocal Microscope, LSCM）应用 | 第18页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第18-19页 |
| 第二章 H_2O_2诱导兔软骨细胞凋亡 | 第19-28页 |
| ·引言 | 第19页 |
| ·实验材料和仪器 | 第19-20页 |
| ·实验动物 | 第19页 |
| ·主要仪器 | 第19页 |
| ·主要试剂 | 第19-20页 |
| ·常用试剂配备 | 第20页 |
| ·实验方法 | 第20-23页 |
| ·原代兔关节软骨细胞的提取与培养 | 第20-21页 |
| ·细胞活性检测 | 第21-22页 |
| ·细胞核荧光染色技术 | 第22页 |
| ·Annexin V-FITC/PI 双染法检测凋亡 | 第22-23页 |
| ·统计分析 | 第23页 |
| ·实验结果 | 第23-26页 |
| ·H_2O_2诱导了浓度依赖性的软骨细胞毒性 | 第23-25页 |
| ·H_2O_2诱导软骨细胞发生细胞形态学以及细胞核的改变 | 第25页 |
| ·H_2O_2诱导软骨细胞凋亡 | 第25-26页 |
| ·总结与讨论 | 第26-28页 |
| 第三章 H_2O_2诱导兔软骨细胞凋亡的机制研究 | 第28-48页 |
| ·引言 | 第28页 |
| ·实验仪器和材料 | 第28-30页 |
| ·主要实验仪器 | 第28-29页 |
| ·主要试剂 | 第29页 |
| ·原代兔关节软骨细胞提取及细胞培养 | 第29-30页 |
| ·质粒 | 第30页 |
| ·实验方法 | 第30-33页 |
| ·细胞转染 | 第30页 |
| ·流式细胞 Rhodamine123 染色检测线粒体膜电位 | 第30-31页 |
| ·RNA 干扰技术 | 第31页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳和 western blotting 检测 | 第31-33页 |
| ·荧光光谱检测 | 第33页 |
| ·统计分析 | 第33页 |
| ·实验结果 | 第33-45页 |
| ·H_2O_2诱导软骨细胞线粒体膜电位（ΔΨm）下降 | 第33-36页 |
| ·H_2O_2作用下软骨细胞溶酶体完整性并未受到破坏 | 第36-38页 |
| ·BID 没有参与 H_2O_2诱导的软骨细胞凋亡 | 第38页 |
| ·Bax 没有参与 H_2O_2诱导的线粒体凋亡通路 | 第38-40页 |
| ·caspase-3 和 caspase-8 而不是 caspase-9 参与 H_2O_2诱导的软骨细胞凋亡 | 第40-43页 |
| ·诱导软骨细胞凋亡通过死亡受体介导的外源性凋亡通路 | 第43-44页 |
| ·H_2O_2诱导 AIF 而非 Cyt.c 从线粒体释放 | 第44-45页 |
| ·总结与讨论 | 第45-48页 |
| 第四章 总结与展望 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-58页 |
| 附录一 中英文缩略词表 | 第58-60页 |
| 附录二 攻读硕士学位期间科研工作情况 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61页 |
