| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 第一章 绪论 | 第9-29页 |
| ·血红蛋白和人血清蛋白质的简介及研究意义 | 第9-12页 |
| ·血清蛋白的简介 | 第9-11页 |
| ·血红蛋白的简介 | 第11-12页 |
| ·血清蛋白的研究意义 | 第12页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳技术概述 | 第12-18页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳简介 | 第13-14页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳基本原理 | 第14-15页 |
| ·不连续电泳的基本原理 | 第15-16页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳的检测方法 | 第16-18页 |
| ·沙丁胺醇和替立定药物简介 | 第18-20页 |
| ·沙丁胺醇简介 | 第18-19页 |
| ·替立定(INN)简介 | 第19-20页 |
| ·微流控芯片电泳技术概述 | 第20-23页 |
| ·微流控芯片电泳简介 | 第20页 |
| ·微流控芯片电泳原理 | 第20-22页 |
| ·微流控芯片制作 | 第22页 |
| ·微流控芯片电泳的检测方法 | 第22-23页 |
| ·微流控芯片电泳的优势及其应用前景 | 第23页 |
| ·纸微流控芯片 | 第23-26页 |
| ·纸微流控芯片的原理及制作方法 | 第23-26页 |
| ·纸微流控芯片的检测方法 | 第26页 |
| ·纸微流控芯片的研究现状及前景 | 第26页 |
| ·直接化学发光成像法概述(Direct Chemiluminescent Imaging) | 第26-28页 |
| ·化学发光(Chemiluminesence,CL)简介 | 第27页 |
| ·直接化学发光成像原理 | 第27-28页 |
| ·本文的工作意义 | 第28-29页 |
| 第二章 聚丙烯酰胺凝胶电泳-化学发光成像技术联用检测血液中的沙丁胺醇 | 第29-41页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳分离蛋白质 | 第29-31页 |
| ·试剂与仪器 | 第29-30页 |
| ·溶液配制 | 第30页 |
| ·单向凝胶电泳 | 第30-31页 |
| ·蛋白质的检测 | 第31-32页 |
| ·试剂与仪器 | 第31页 |
| ·溶液配制 | 第31-32页 |
| ·直接化学发光成像法检测蛋白质 | 第32页 |
| ·考马斯亮蓝染色法(考染法)检测蛋白质 | 第32页 |
| ·化学发光成像结果的分析 | 第32页 |
| ·结果与讨论 | 第32-39页 |
| ·药物在血清中的存在 | 第32-33页 |
| ·正常人(没有服用沙丁胺醇)血清Hp检测 | 第33页 |
| ·18组服用沙丁胺醇的志愿者血清Hp检测 | 第33-36页 |
| ·机理讨论 | 第36-39页 |
| ·小结 | 第39-41页 |
| 第三章 纸微流控芯片电泳-直接化学发光成像技术联用检测人血清蛋白质 | 第41-53页 |
| ·试剂与仪器 | 第41-44页 |
| ·试剂 | 第41-42页 |
| ·仪器 | 第42页 |
| ·溶液的配置 | 第42-43页 |
| ·纸微流控芯片的制作 | 第43页 |
| ·蛋白质电泳条件 | 第43页 |
| ·直接化学发光成像方法检测利用Hb标记的血清蛋白 | 第43-44页 |
| ·染色法检测蛋白质 | 第44页 |
| ·结果与讨论 | 第44-52页 |
| ·PDMS纸微流控电泳芯片的制作 | 第45页 |
| ·通道宽度优化 | 第45-46页 |
| ·EDC/NHS(1:3)浓度的优化实验 | 第46-48页 |
| ·发光试剂浓度的优化 | 第48-49页 |
| ·PDMS纸微流控芯片添加剂SDS浓度的优化实验 | 第49-50页 |
| ·蛋白质的指认 | 第50-51页 |
| ·利用染色法进行检测 | 第51-52页 |
| ·定量分析 | 第52页 |
| ·实验小结 | 第52-53页 |
| 第四章 结论与展望 | 第53-55页 |
| ·主要结论 | 第53页 |
| ·问题与展望 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-73页 |
| 致谢 | 第73-75页 |
| 攻读硕士期间主要研究成果 | 第75页 |
