摘要 | 第1-8页 |
Abstract | 第8-19页 |
第一章 前言 | 第19-44页 |
·重金属污染土壤的植物修复技术 | 第19-20页 |
·重金属离子吸收和转移机制 | 第20-21页 |
·木质部运输 | 第21-22页 |
·对重金属的解毒机制 | 第22-28页 |
·细胞壁的钝化和区室化作用 | 第22-23页 |
·植物络合素(PCs) | 第23-27页 |
·植物金属硫蛋白 | 第27-28页 |
·有机酸和氨基酸 | 第28页 |
·生物体中的元素形态分析 | 第28-33页 |
·联用技术的分离方法 | 第29-31页 |
·HPLC分离法 | 第29-30页 |
·电泳分离法 | 第30-31页 |
·检测技术 | 第31-32页 |
·原子吸收光谱法(AAS) | 第31页 |
·原子发射光谱法(AES) | 第31页 |
·电感耦合等离子体质谱法(ICP-MS) | 第31-32页 |
·软电离源质谱分析 | 第32页 |
·接口技术 | 第32-33页 |
·实验依据与主要工作内容 | 第33-34页 |
·参考文献 | 第34-44页 |
第二章 镉超富集植物小白菜Brassica chinensis L.在镉胁迫下的协同抵御机制研究 | 第44-70页 |
·前言 | 第44-45页 |
·实验部分 | 第45-50页 |
·仪器 | 第45页 |
·植物材料和生长条件 | 第45-46页 |
·水培 | 第45-46页 |
·土培 | 第46页 |
·镉在小白菜体内的吸收和分布 | 第46-47页 |
·RPLC测定PCs和相关含巯基的多肽 | 第47页 |
·H_2O_2和膜脂过氧化测定 | 第47-48页 |
·酶活性的测量 | 第48-50页 |
·样品提取 | 第48页 |
·超氧化物歧化酶SOD酶活力测量 | 第48-49页 |
·愈创木酚过氧化酶POD酶活力测量 | 第49页 |
·过氧化氢酶CAT酶活力测量 | 第49页 |
·抗坏血酸过氧化酶APX酶活力测量 | 第49-50页 |
·统计分析 | 第50页 |
·结果 | 第50-59页 |
·镉在小白菜体内的吸收和分布 | 第50-52页 |
·镉胁迫下PCs的产生 | 第52-56页 |
·小白菜在镉胁迫下被氧化程度和抗氧化反应 | 第56-59页 |
·讨论 | 第59-63页 |
·参考文献 | 第63-70页 |
第三章 SEC-ICP-MS和ESI-MS/MS分析小白菜体外合成和体内合成的Cd-phytochelatin络合物 | 第70-89页 |
·前言 | 第70-71页 |
·实验 | 第71-74页 |
·仪器 | 第71页 |
·化学试剂 | 第71页 |
·植物 | 第71-73页 |
·PCs的分析和纯化制备 | 第73-74页 |
·Cd-PC络合物的体外合成 | 第74页 |
·体内Cd-PC络合物的分析 | 第74页 |
·结果与讨论 | 第74-82页 |
·SEC-ICP-MS的元素 | 第74-76页 |
·体外合成的Cd-PC络合物分析 | 第76-82页 |
·ESI-MS/MS分析小白菜体内产生的Cd-PC络合物 | 第82页 |
·结论 | 第82-84页 |
·参考文献 | 第84-89页 |
第四章 PCs和Hg-PC络合物在汞胁迫下小白菜体内的解毒作用研究 | 第89-110页 |
·前言 | 第89-90页 |
·实验 | 第90-92页 |
·仪器 | 第90页 |
·化学试剂 | 第90-91页 |
·植物 | 第91页 |
·Hg在小白菜体内的吸收和分布 | 第91页 |
·Hg胁迫下的小白菜体内PCs和Hg-PC络合物的提取 | 第91-92页 |
·RPLC测定不同Hg基质胁迫下小白菜体内的PCs | 第92页 |
·体外合成及体内合成的Hg-PC络合物的分析 | 第92页 |
·结果 | 第92-104页 |
·不同Hg基质胁迫对小白菜体内汞的积累及植株生长状态的影响 | 第93页 |
·不同Hg基质胁迫下小白菜体内产生的PCs | 第93-96页 |
·体外合成的Hg-PC络合物色谱和质谱分析 | 第96-99页 |
·(HgCl_2+HA)和HgCys_2胁迫的小白菜根部产生的Hg-PC络合物分析 | 第99-104页 |
·讨论 | 第104-105页 |
·结论 | 第105页 |
·参考文献 | 第105-110页 |
第五章 总结与展望 | 第110-112页 |
·总结 | 第110页 |
·展望 | 第110-112页 |
在校期间发表的论文 | 第112-113页 |
致谢 | 第113页 |