| 第一章 文献综述 | 第1-47页 |
| 1 类胡萝卜素研究进展 | 第16-23页 |
| ·类胡萝卜素的结构 | 第16-17页 |
| ·类胡萝卜素的功能与用途 | 第17-19页 |
| ·产生类胡萝卜素的微生物 | 第19-21页 |
| ·类胡萝卜素生物合成的遗传工程研究 | 第21-23页 |
| 2 丝状真菌的菌核及其研究进展 | 第23-26页 |
| ·菌核的概念、结构和发生 | 第23页 |
| ·菌核的发育 | 第23-24页 |
| ·影响菌核发生的物理、化学和生物因素 | 第24-25页 |
| ·菌核的起源 | 第25-26页 |
| 3 青霉及其分类研究 | 第26-32页 |
| ·青霉的分类历史和分类方法 | 第26-28页 |
| ·现代分子生物学分类方法 | 第28-30页 |
| ·RAPD分析 | 第30-32页 |
| 4 固态发酵研究进展 | 第32-35页 |
| ·底物(基质)研究 | 第33-34页 |
| ·过程控制参数 | 第34-35页 |
| 5 本研究的目的、意义及主要内容 | 第35-38页 |
| 参考文献 | 第38-47页 |
| 第二章 青霉PT95菌株的形态观察 | 第47-53页 |
| 1 材料与方法 | 第47-48页 |
| ·菌株 | 第47页 |
| ·培养基 | 第47页 |
| ·实验方法 | 第47-48页 |
| 2 结果 | 第48页 |
| 3 结论和讨论 | 第48-52页 |
| 参考文献 | 第52-53页 |
| 第三章 青霉总DNA提取方法比较 | 第53-60页 |
| 1 材料与方法 | 第53-55页 |
| ·供试菌株 | 第53页 |
| ·培养方法 | 第53页 |
| ·试剂 | 第53页 |
| ·主要仪器设备 | 第53-54页 |
| ·DNA提取方法 | 第54-55页 |
| 2 结果和讨论 | 第55-59页 |
| ·CTAB法提取DNA | 第55-57页 |
| ·SDS-CTAB法提取DNA | 第57页 |
| ·氯化苄法提取DNA | 第57页 |
| ·提取液的pH值对提取效果的影响 | 第57-58页 |
| ·液氮研磨对提取结果的影响 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-60页 |
| 第四章 PT95菌株和其它青霉菌株的RAPD分析 | 第60-67页 |
| 1 材料与方法 | 第60-61页 |
| ·菌株 | 第60页 |
| ·试剂 | 第60页 |
| ·PCR扩增反应 | 第60-61页 |
| 2 结果 | 第61-66页 |
| ·引物筛选及RAPD标记多态性 | 第61-62页 |
| ·聚类分析 | 第62页 |
| ·PT95菌株的分类地位 | 第62-66页 |
| 参考文献 | 第66-67页 |
| 第五章 氧胁迫和外源β-胡萝卜素对青霉PT95菌株菌核分化和类胡萝卜素产率的影响 | 第67-77页 |
| 1 材料与方法 | 第68-69页 |
| ·菌株 | 第68页 |
| ·培养基 | 第68页 |
| ·固态培养 | 第68页 |
| ·液态培养 | 第68页 |
| ·类胡萝卜素的提取和含量测定 | 第68-69页 |
| ·脂质过氧化水平的测定 | 第69页 |
| ·蛋白质浓度测定 | 第69页 |
| 2 结果 | 第69-74页 |
| ·PT95菌株分化发育情况 | 第69页 |
| ·氧胁迫对PT95菌株的菌核生物量和色素产率的影响 | 第69-71页 |
| ·不同氧胁迫培养条件的比较 | 第71页 |
| ·外源β-胡萝卜素对PT95菌株菌核分化的影响 | 第71-72页 |
| ·外源β-胡萝卜素对PT95菌株菌核中色素含量的影响 | 第72页 |
| ·外源β-胡萝卜素对PT95菌株脂质过氧化水平的影响 | 第72-74页 |
| 3 讨论 | 第74页 |
| 参考文献 | 第74-77页 |
| 第六章 抗坏血酸与青霉PT95菌株菌核分化和脂质过氧化的关系 | 第77-86页 |
| 1 材料与方法 | 第77-79页 |
| ·菌株 | 第77页 |
| ·主要化学试剂 | 第77-78页 |
| ·培养基 | 第78页 |
| ·实验方法 | 第78页 |
| ·抗坏血酸含量测定 | 第78页 |
| ·脂质过氧化水平的测定 | 第78-79页 |
| ·蛋白质浓度测定 | 第79页 |
| 2 结果 | 第79-82页 |
| ·PT95菌株在Joham's培养基上的分化发育情况 | 第79页 |
| ·PT95菌株在Joham's培养基上不同发育时期的抗坏血酸含量 | 第79页 |
| ·PT95菌株在Joham's培养基上不同发育时期的脂质过氧化水平 | 第79-81页 |
| ·外源抗坏血酸对PT95菌株菌核分化的影响 | 第81-82页 |
| ·外源抗坏血酸对PT95菌株脂质过氧化水平的影响 | 第82页 |
| 3 结论 | 第82-83页 |
| 4 讨论 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-86页 |
| 第七章 无机盐和碳氮源对青霉PT95菌株类胡萝卜素产率的影响 | 第86-93页 |
| 1 材料与方法 | 第86-87页 |
| ·菌株 | 第86页 |
| ·培养基 | 第86-87页 |
| ·实验方法 | 第87页 |
| ·菌核生物量的测定 | 第87页 |
| ·类胡萝卜素的提取及含量测定 | 第87页 |
| ·类胡萝卜素组分分离 | 第87页 |
| ·β-胡萝卜素的测定 | 第87页 |
| ·统计学处理 | 第87页 |
| 2 结果与分析 | 第87-91页 |
| ·无机盐对菌核生物量和类胡萝卜素产率的影响 | 第87-89页 |
| ·碳源对菌核生物量和类胡萝卜素产率的影响 | 第89页 |
| ·氮源对菌核生物量和类胡萝卜素产率的影响 | 第89页 |
| ·碳源和氮源浓度对菌核生物量和类胡萝卜素产率的影响 | 第89-91页 |
| ·碳源和氮源对PT95菌株类胡萝卜素成分的影响 | 第91页 |
| 3 讨论 | 第91-92页 |
| 参考文献 | 第92-93页 |
| 第八章 几种诱导子对青霉PT95菌株固态发酵产生类胡萝卜素的影响 | 第93-101页 |
| 1 材料与方法 | 第93-95页 |
| ·菌株 | 第93-94页 |
| ·诱导子的制备 | 第94页 |
| ·固态发酵 | 第94页 |
| ·菌核生物量测定 | 第94页 |
| ·类胡萝卜素的提取及含量测定 | 第94页 |
| ·类胡萝卜素组分分离 | 第94-95页 |
| ·β-胡萝卜素的测定 | 第95页 |
| ·统计学处理 | 第95页 |
| 2 结果与讨论 | 第95-98页 |
| ·诱导子对PT95菌核生物量的影响 | 第95-96页 |
| ·诱导子对PT95菌核中的类胡萝卜素含量的影响 | 第96页 |
| ·诱导子对PT95菌株类胡萝卜素产率的影响 | 第96-97页 |
| ·诱导子对β-胡萝卜素在色素中的百分含量的影响 | 第97-98页 |
| ·诱导子对PT95菌株产生分生孢子的影响 | 第98页 |
| 3 结论 | 第98-99页 |
| 参考文献 | 第99-101页 |
| 第九章 青霉PT95菌株利用谷物进行类胡萝卜素固态发酵的研究 | 第101-108页 |
| 1 材料与方法 | 第101-102页 |
| ·菌株 | 第101页 |
| ·接种物的准备 | 第101页 |
| ·固态发酵培养基 | 第101-102页 |
| ·固态发酵方法 | 第102页 |
| ·菌核生物量测定 | 第102页 |
| ·类胡萝卜素的提取及含量测定 | 第102页 |
| ·类胡萝卜素组分分离 | 第102页 |
| ·β-胡萝卜素的测定 | 第102页 |
| ·统计学处理 | 第102页 |
| 2 结果 | 第102-106页 |
| ·接种方式和接种量对PT95菌株菌核生物量和类胡萝卜素含量的影响 | 第102-104页 |
| ·谷物培养基对PT95菌株菌核生物量和类胡萝卜素产率的影响 | 第104页 |
| ·添加麸皮对PT95菌株菌核生物量和类胡萝卜素产率的影响 | 第104-105页 |
| ·谷物培养基对PT95菌株类胡萝卜素成分的影响 | 第105-106页 |
| 3 讨论 | 第106-107页 |
| 参考文献 | 第107-108页 |
| 附录 | 第108-109页 |
| 1 攻读博士学位期间参加的相关课题 | 第108页 |
| 2 攻读博士学位期间发表的相关论文 | 第108-109页 |
| 致谢 | 第109-110页 |
| 承诺书 | 第110页 |
