缩略语表 | 第1-7页 |
中文摘要 | 第7-10页 |
英文摘要 | 第10-13页 |
前言 | 第13-16页 |
第一部分 DC的培养及其功能学研究 | 第16-54页 |
一. 样本 | 第16页 |
二. 实验试剂及耗材 | 第16页 |
三. 主要仪器 | 第16-17页 |
四. 试剂配制 | 第17-18页 |
第一章 DC细胞培养 | 第18-23页 |
一. 方法 | 第18页 |
1 DC细胞的培养 | 第18页 |
2 光镜下观察培养过程中DC细胞的形态学变化并拍照 | 第18页 |
二. 结果 | 第18-21页 |
三. 结论 | 第21-23页 |
第二章 DC细胞表型分析 | 第23-27页 |
一. 方法 | 第23页 |
1 DC细胞的培养单细胞悬液 | 第23页 |
2 DC细胞免疫荧光标记 | 第23页 |
3 FACS分析DC细胞免疫表型 | 第23页 |
二. 结果 | 第23-26页 |
三. 结论 | 第26页 |
四. 讨论 | 第26-27页 |
第三章 DC细胞诱导T淋巴细胞活化及亚群的变化情况 | 第27-36页 |
一. 方法:实验分2部分进行 | 第27-28页 |
1 第1部分:DC细胞诱导T细胞活化实验 | 第27页 |
2 第2部分:DC细胞诱导T淋巴细胞各亚群分化 | 第27-28页 |
二. 结果 | 第28-32页 |
三. 结论 | 第32-33页 |
四. 讨论 | 第33-36页 |
第四章 DC细胞诱导T淋巴细胞增殖 | 第36-41页 |
一. 方法 | 第36页 |
1 成熟DC细胞培养以及获得 | 第36页 |
2 分离同一供体外周血淋巴细胞 | 第36页 |
3 抑制DC细胞增殖并诱导T淋巴细胞活化 | 第36页 |
4 灭活RNA并检测PI值 | 第36页 |
二. 结果 | 第36-38页 |
三. 结论 | 第38页 |
四. 讨论 | 第38-41页 |
第五章 DC细胞诱导T淋巴细胞定向分化的研究 | 第41-51页 |
一. 方法 | 第41-42页 |
1 培养成熟DC细胞 | 第41页 |
2 多克隆T淋巴细胞的制备及其激活 | 第41页 |
3 固定并破膜 | 第41页 |
4 免疫标记 | 第41页 |
5 三色法FCM检测和分析 | 第41-42页 |
二. 结果 | 第42-46页 |
三. 结论 | 第46页 |
四. 讨论 | 第46-51页 |
第六章 DC细胞递呈抗原后的凋亡情况 | 第51-54页 |
一. 方法 | 第51页 |
1 培养DC细胞 | 第51页 |
2 培养并分离外周血淋巴细胞方法同前 | 第51页 |
3 DC细胞递呈抗原,诱导T淋巴细胞活化 | 第51页 |
4 Annexin V-FITC vs PI标记DC细胞细胞 | 第51页 |
5 FCM检测 | 第51页 |
二. 结果 | 第51-53页 |
三. 结论 | 第53页 |
四. 讨论 | 第53-54页 |
第二部分 DC细胞递呈抗原的形态学基础 | 第54-78页 |
第一章 DC细胞的CD86表达位点与超微结构 | 第54-58页 |
一. 方法 | 第54-55页 |
1 扫描电镜观察DC细胞及其与T细胞作用 | 第54页 |
2 透射电镜观察DC细胞的树突状结构及凋亡状态的DC细胞超微结构 | 第54页 |
3 织化学法观察DC细胞黏附分子CD86的表达位置 | 第54-55页 |
二. 结果 | 第55-57页 |
三. 结论 | 第57-58页 |
第二章 原子力显微镜分析DC细胞结构 | 第58-64页 |
一. 方法 | 第58页 |
1 AFM对DC细胞超微结构的纳米级检测 | 第58页 |
2 AFM对DC细胞与淋巴细胞相互作用的纳米级检测 | 第58页 |
二. 结果 | 第58-62页 |
三. 结论 | 第62页 |
四. 讨论 | 第62-64页 |
第三章 DC细胞CD分子分布及与T细胞相互作用的动态分析 | 第64-78页 |
一. 方法 | 第64-68页 |
1 共聚焦显微镜观察DC细胞表面CD分子的表达位点 | 第64页 |
2 镜观察DC细胞与CD4+T淋巴细胞的相互作用(静态) | 第64页 |
3 共聚焦显微镜观察DC的吞噬功能 | 第64-65页 |
4 DC细胞在抗原提呈过程中细胞内Ca~+浓度以及其形态学的变化测定 | 第65-68页 |
二. 结果 | 第68-74页 |
三. 结论 | 第74页 |
四. 讨论 | 第74-78页 |
研究结论 | 第78-80页 |
参考文献 | 第80-84页 |
致谢 | 第84-85页 |
综述 | 第85-91页 |