提要 | 第1-12页 |
第一章 绪论 | 第12-42页 |
·植物脂肪酸 | 第12-13页 |
·脂肪酸的生物合成 | 第13-18页 |
·脂肪酸从头合成 | 第14-18页 |
·脂肪酸生物合成acyl-coA 的来源 | 第14-15页 |
·脂肪酸合成酶(FAS) | 第15-18页 |
·脂肪酸的修饰 | 第18页 |
·生物素和生物素酶 | 第18-20页 |
·乙酰辅酶A 羧化酶 | 第20-31页 |
·ACCase 的类型 | 第21-23页 |
·异质型ACCase | 第21页 |
·同质型ACCase | 第21-23页 |
·植物中的ACCase | 第23页 |
·ACCase 的结构 | 第23-28页 |
·生物素羧化酶(BC)的结构 | 第23-25页 |
·羧基转移酶(CT)的结构 | 第25-27页 |
·生物素载体蛋白(BCCP)的结构 | 第27-28页 |
·ACCase 的生物学功能 | 第28-31页 |
·ACCase 是脂肪酸合成的关键限速酶 | 第28-29页 |
·植物细胞中ACCase 的功能 | 第29-30页 |
·动物细胞中ACCase 的功能 | 第30-31页 |
·化学除草剂在农业中的应用 | 第31-33页 |
·化学除草剂的除草机理 | 第31-32页 |
·化学除草剂应用中存在的主要问题 | 第32-33页 |
·本研究意义及实验设计 | 第33-36页 |
·研究意义 | 第33-35页 |
·实验设计 | 第35-36页 |
·参考文献 | 第36-42页 |
第二章 除草剂对大麦和黄瓜叶片脂肪酸的影响 | 第42-69页 |
·前言 | 第42-43页 |
·实验设计 | 第43-44页 |
·实验材料 | 第44-45页 |
·主要仪器 | 第44-45页 |
·主要试剂 | 第45页 |
·实验方法 | 第45-49页 |
·大麦(Maris otter)和黄瓜(Restina) 的栽培 | 第45页 |
·除草剂水溶液的配制 | 第45-46页 |
·大麦叶片同位素标记实验 | 第46页 |
·黄瓜叶片同位素标记试验 | 第46-47页 |
·大麦,黄瓜叶片总脂类的提取与检测 | 第47页 |
·大麦,黄瓜叶片脂肪酸甲酯的提取与检测 | 第47-49页 |
·结果与讨论 | 第49-67页 |
·同位素标记实验条件的优化 | 第49-50页 |
·不同有机溶剂对脂肪酸合成的影响 | 第49页 |
·不同有机溶剂,不同的孵育方法对脂肪酸合成的影响 | 第49-50页 |
·“K3”和“Z”类型除草剂对植物脂肪酸合成的影响 | 第50-63页 |
·[1-~(14)C] Acetate 标记实验 | 第51-58页 |
·[2-~(14)C] Malonate 标记实验 | 第58-63页 |
·Pinoxaden 对植物脂类的影响 | 第63-67页 |
·[1-~(14)C] Acetate 标记实验 | 第63-67页 |
·本章小结 | 第67-68页 |
·参考文献 | 第68-69页 |
第三章 酿酒酵母ACCASE CT 功能域基因克隆、表达以及性质研究 | 第69-117页 |
·CT 功能域基因克隆 | 第69-95页 |
·引言 | 第69-70页 |
·实验设计 | 第70-71页 |
·实验材料 | 第71-74页 |
·主要仪器 | 第71页 |
·主要试剂 | 第71-72页 |
·实验菌株 | 第72页 |
·实验用质粒 | 第72页 |
·溶液配制 | 第72-74页 |
·实验方法 | 第74-85页 |
·酵母总RNA 提取 | 第74-76页 |
·酵母的培养 | 第74-75页 |
·酵母菌株总RNA 提取 | 第75页 |
·酵母总RNA 鉴定 | 第75-76页 |
·酵母cDNA 文库的制备—逆转录反应 | 第76页 |
·目的基因的扩增 | 第76-77页 |
·重组质粒的构建 | 第77-81页 |
·BH28a 重组质粒转化大肠杆菌 | 第81-82页 |
·目的基因的诱导表达 | 第82页 |
·SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第82-84页 |
·表达条件的优化 | 第84-85页 |
·表达菌株的优化 | 第84页 |
·最佳表达温度确定 | 第84页 |
·IPTG 诱导条件的优化 | 第84-85页 |
·结果与讨论 | 第85-94页 |
·酵母总RNA 的提取 | 第85-86页 |
·PCR 扩增目的基因 | 第86-88页 |
·酵母ACCase CT 功能域基因的确定 | 第86-87页 |
·特异性引物扩增目的基因 | 第87-88页 |
·酵母ACCase CT 功能域基因重组质粒的构建 | 第88-90页 |
·表达载体 | 第90-91页 |
·重组质粒表达条件的优化 | 第91-94页 |
·表达菌株的选择 | 第91-94页 |
·小结 | 第94-95页 |
·包涵体的溶解与复性 | 第95-115页 |
·前言 | 第95-97页 |
·实验材料 | 第97-99页 |
·实验方法 | 第99-105页 |
·细胞破碎及蛋白提取 | 第99页 |
·包涵体的洗涤与溶解 | 第99-100页 |
·NI-亲合层析纯化 | 第100-101页 |
·Ni-亲合层析柱处理 | 第100-101页 |
·Ni-亲合层析纯化 | 第101页 |
·蛋白浓度的测定 | 第101页 |
·包涵体的复性 | 第101-105页 |
·稀释复性法 | 第102页 |
·透析复性法 | 第102页 |
·系统透析复性法 | 第102-103页 |
·活力测定 | 第103-104页 |
·复性蛋白的荧光光谱分析 | 第104-105页 |
·复性蛋白的圆二色谱分析 | 第105页 |
·结果与讨论 | 第105-114页 |
·包涵体的洗涤与溶解 | 第105-108页 |
·亲合层析纯化 | 第108-109页 |
·包涵体的复性 | 第109-110页 |
·不同复性方法酶活力的比较 | 第110-111页 |
·非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第111-112页 |
·荧光光谱测定 | 第112-113页 |
·圆二色谱分析 | 第113-114页 |
·小结 | 第114-115页 |
·参考文献 | 第115-117页 |
全文总结 | 第117-120页 |
1. 已取得成果 | 第117-118页 |
2. 研究中存在的问题 | 第118页 |
3. 展望 | 第118-120页 |
·对Acetamides 的进一步研究 | 第118-119页 |
·ACCase CT 功能域模型的进一步优化 | 第119-120页 |
博士论文期间主要成果 | 第120-121页 |
致谢 | 第121-122页 |
中文摘要 | 第122-125页 |
ABSTRACT | 第125-127页 |