| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-16页 |
| 1 前言 | 第16-21页 |
| ·选题依据 | 第16-17页 |
| ·研究思路和问题的提出 | 第17-18页 |
| ·研究目标和内容 | 第18页 |
| ·研究假设 | 第18-19页 |
| ·技术路线 | 第19-20页 |
| ·研究意义 | 第20-21页 |
| 2 文献综述 | 第21-61页 |
| ·高原训练和低氧训练的研究进展 | 第21-34页 |
| ·概述 | 第21-22页 |
| ·机体在器官、系统水平对高原训练的反应和适应 | 第22-24页 |
| ·机体在细胞、分子水平对高原训练的反应和适应 | 第24-32页 |
| ·高原训练存在的问题 | 第32-34页 |
| ·EPO 的功能及其高原训练中的作用规律 | 第34-44页 |
| ·红细胞生成的调节 | 第34-35页 |
| ·EPO 的功能 | 第35-36页 |
| ·重组人促红细胞生成素(recombinant human erythropietin,rHuEPO) | 第36-38页 |
| ·EPO 受体(EPO-R) | 第38-40页 |
| ·EPO 的调控 | 第40-41页 |
| ·低氧及低氧训练时 EPO 的变化规律 | 第41页 |
| ·急性低氧暴露时 EPO 的变化规律 | 第41-42页 |
| ·持续低氧暴露过程中 EPO 下降的可能原因 | 第42-44页 |
| ·aHIF 的发现及其在低氧过程中的作用 | 第44-50页 |
| ·反义 RNA | 第44页 |
| ·RNA 干扰(RNA interference,RNAi) | 第44-45页 |
| ·天然反义转录现象——天然反义转录本(natural antisense transcripts,NAT) | 第45-46页 |
| ·aHIF 的发现及其在低氧中的作用 | 第46-50页 |
| ·个体差异研究 | 第50-54页 |
| ·概述 | 第50-52页 |
| ·共性与个性的辨证关系 | 第52页 |
| ·研究个体差异的方法——判断个体差异的存在并寻找个体差异的标志物 | 第52-54页 |
| ·高原训练效果的个体差异及相关影响因素 | 第54-61页 |
| ·铁缺乏(iron deficiency) | 第54页 |
| ·HIF-1 | 第54-55页 |
| ·EPO | 第55-56页 |
| ·网织红细胞(reticulocyte,Ret) | 第56-57页 |
| ·红细胞生成(erythropoiesis) | 第57-58页 |
| ·新细胞溶解(neocytolysis) | 第58页 |
| ·动脉血氧饱和度(S_aO_2)和脉搏血氧饱和度(S_pO_2) | 第58-59页 |
| ·VO_(2max) | 第59-61页 |
| 3 研究方法 | 第61-81页 |
| ·研究一 高原训练中 EPO 早期下降的机制 | 第61-70页 |
| ·引言 | 第61-62页 |
| ·研究对象和方法 | 第62-70页 |
| ·研究对象 | 第62-64页 |
| ·技术路线 | 第64页 |
| ·实验仪器和试剂 | 第64-65页 |
| ·测试指标和测试方法 | 第65-69页 |
| ·统计学方法 | 第69-70页 |
| ·研究二 EPO 对急性低氧暴露的反应及其对高原训练效果的预测作用 | 第70-81页 |
| ·引言 | 第70-72页 |
| ·研究对象和方法 | 第72-81页 |
| ·研究对象 | 第72-73页 |
| ·技术路线 | 第73-77页 |
| ·测试指标和测试方法 | 第77-80页 |
| ·统计学方法 | 第80-81页 |
| 4.分析讨论 | 第81-135页 |
| ·研究一结果、分析和讨论 | 第81-108页 |
| ·研究一结果 | 第81-95页 |
| ·NT 组和 HT 组 MAV 和运动强度的确定 | 第81页 |
| ·大鼠体重的变化 | 第81-82页 |
| ·红细胞生成指标(RBC、Hb、HCT)的变化 | 第82-85页 |
| ·RVPO_2的变化 | 第85-86页 |
| ·s-EPO 的变化 | 第86-87页 |
| ·s-EPO 与 RVPO_2的关系 | 第87-89页 |
| ·肾皮质 EPO 基因表达的变化 | 第89-92页 |
| ·肾皮质 HIF-1α基因表达的变化 | 第92-94页 |
| ·肾皮质 aHIF 的变化 | 第94-95页 |
| ·研究一分析讨论 | 第95-107页 |
| ·低氧模型的选择 | 第95-96页 |
| ·测量信度 | 第96-97页 |
| ·低氧、运动对红细胞生成的影响 | 第97页 |
| ·RVPO_2是决定 EPO 产生的重要因素 | 第97-99页 |
| ·低氧、运动对 s-EPO 的影响 | 第99-100页 |
| ·低氧、运动对肾脏 EPO 基因表达的影响 | 第100-101页 |
| ·低氧、运动对肾脏 HIF-1α基因表达的影响 | 第101-102页 |
| ·aHIF 参与了 HIF-1α mRNA 的降解 | 第102-104页 |
| ·EPO 在低氧训练过程中早期下降的机制 | 第104-105页 |
| ·"潜伏期"的实质 | 第105-107页 |
| ·研究一小结 | 第107-108页 |
| ·研究二结果、分析和讨论 | 第108-135页 |
| ·研究二结果 | 第108-122页 |
| ·TRIMPS | 第108-110页 |
| ·红细胞生成指标的变化及测量信度 | 第110-111页 |
| ·s-EPO、s-HIF-1α、白细胞 HIF-1α mRNA 和 aHIF 的变化 | 第111-116页 |
| ·VO_(2max)的变化 | 第116-118页 |
| ·个体差异的定性定量表达 | 第118-120页 |
| ·相关分析 | 第120-122页 |
| ·研究二分析讨论 | 第122-134页 |
| ·受试者 | 第122页 |
| ·对照组的设立 | 第122页 |
| ·测量信度 | 第122-123页 |
| ·"引导期"训练 | 第123-124页 |
| ·TRIMPS | 第124-125页 |
| ·补铁及红细胞生成指标的变化 | 第125-127页 |
| ·EPO 分泌的昼夜节律 | 第127-128页 |
| ·机能状态与运动能力(竞技状态)的区别与联系——对机能指标进行积分 | 第128-129页 |
| ·白细胞基因表达在运动员机能监控中应用的可行性 | 第129页 |
| ·高原训练的个体差异(相关因素研究)和高原训练效果预测指标的筛选(敏感预测因素研究) | 第129-134页 |
| ·研究二小结 | 第134-135页 |
| 5 结论与建议 | 第135-138页 |
| ·结论 | 第135页 |
| ·建议 | 第135-138页 |
| 6 参考文献 | 第138-150页 |
| 7 致谢 | 第150-151页 |
| 8 个人简历 在读期间发表的学术论文与研究成果 | 第151页 |
