| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-24页 |
| 第1章 绪论 | 第24-44页 |
| ·选题背景 | 第24-25页 |
| ·宫颈癌发生的分子机制和治疗现状 | 第25-38页 |
| ·宫颈癌发生的分子机制 | 第25-34页 |
| ·宫颈癌治疗现状 | 第34-37页 |
| ·龙葵药学作用研究现状 | 第37-38页 |
| ·多糖类药物抑制肿瘤生长的作用机理研究进展 | 第38-41页 |
| ·免疫调节作用 | 第38-39页 |
| ·改变肿瘤细胞周期 | 第39页 |
| ·诱导细胞凋亡 | 第39-40页 |
| ·对细胞生化代谢的影响 | 第40页 |
| ·清除自由基作用 | 第40-41页 |
| ·抑制肿瘤组织血管生成与肿瘤的侵袭转移 | 第41页 |
| ·本文的主要研究内容和意义 | 第41-44页 |
| ·研究内容 | 第41-42页 |
| ·研究意义 | 第42-44页 |
| 第2章 龙葵多糖的分离、纯化和一般特性分析 | 第44-59页 |
| ·材料 | 第44-45页 |
| ·主要试剂 | 第44-45页 |
| ·主要试验仪器 | 第45页 |
| ·方法 | 第45-49页 |
| ·SNL-P 的制备 | 第45-46页 |
| ·龙葵多糖各级分的制备 | 第46-47页 |
| ·SNL-P1 亚级分的制备 | 第47页 |
| ·中性糖含量测定 | 第47页 |
| ·蛋白质含量测定 | 第47-48页 |
| ·SNL-P1 各亚级分的纯度鉴定 | 第48页 |
| ·SNL-P1 各亚级分抗小鼠宫颈癌(U14)活性的测定 | 第48页 |
| ·SNL-P1a 的特征分析 | 第48-49页 |
| ·数据处理 | 第49页 |
| ·结果 | 第49-55页 |
| ·龙葵多糖的提取 | 第49页 |
| ·龙葵多糖各级分的制备 | 第49-50页 |
| ·SNL-P1 亚级分的制备 | 第50-51页 |
| ·SNL-P1 亚级分总糖含量和蛋白质含量 | 第51页 |
| ·SNL-P1 各亚级分纯度的鉴定 | 第51页 |
| ·SNL-P1 各亚级分对小鼠宫颈癌(U14)的抑制作用 | 第51-53页 |
| ·HPLC 对SNL-P1a 的纯度鉴定 | 第53页 |
| ·SNL-P1a 紫外光谱分析结果 | 第53-54页 |
| ·SNL-P1a 红外光谱分析结果 | 第54页 |
| ·SNL-P1a 的单糖组成分析 | 第54-55页 |
| ·SNL-P1a 的性状 | 第55页 |
| ·讨论 | 第55-58页 |
| ·本章小结 | 第58-59页 |
| 第3章 龙葵多糖亚级分1a 体内、外抗宫颈癌作用的研究 | 第59-75页 |
| ·材料 | 第59-60页 |
| ·药品和试剂 | 第59-60页 |
| ·主要试验仪器 | 第60页 |
| ·试验动物和细胞株 | 第60页 |
| ·方法 | 第60-63页 |
| ·SNL-P1a 用药安全性检测 | 第60-61页 |
| ·SNL-P1a 体外对U14 细胞增殖活性作用 | 第61页 |
| ·荷U14 宫颈癌实体瘤小鼠模型的建立 | 第61页 |
| ·荷U14 宫颈癌腹水瘤小鼠模型的建立 | 第61页 |
| ·SNL-P1a 对小鼠治疗剂量的确定 | 第61-62页 |
| ·试验分组和治疗方案 | 第62页 |
| ·肿瘤抑制率和生命延长率的测定 | 第62页 |
| ·SNL-P1a 对宫颈癌U14 肺转移的干扰作用 | 第62-63页 |
| ·数据处理 | 第63页 |
| ·结果 | 第63-71页 |
| ·SNL-P1a 用药安全性检测 | 第63-65页 |
| ·SNL-P1a 体外对U14 细胞增殖活性的影响 | 第65页 |
| ·小鼠荷U14 宫颈癌实体瘤模型和腹水瘤模型建立与评价 | 第65-66页 |
| ·SNL-P1a 体内对小鼠宫颈癌U14 实体瘤的生长抑制作用 | 第66-67页 |
| ·SNL-P1a 体内对小鼠宫颈癌U14 腹水瘤的生长抑制作用 | 第67-69页 |
| ·SNL-P1a 对荷瘤小鼠存活时间的影响 | 第69-70页 |
| ·SNL-P1a 对小鼠宫颈癌U14 肺转移的干扰作用 | 第70-71页 |
| ·讨论 | 第71-74页 |
| ·SNL-P1a 用药安全性的讨论 | 第71页 |
| ·小鼠荷宫颈癌U14 模型的建立与评价 | 第71-72页 |
| ·SNL-P1a 体内、外抗宫颈癌活性的讨论 | 第72-73页 |
| ·SNL-P1a 体内对小鼠宫颈癌肺转移的抑制作用 | 第73-74页 |
| ·本章小结 | 第74-75页 |
| 第4章 龙葵多糖亚级分1a 对荷瘤小鼠机体免疫调节作用的研究 | 第75-98页 |
| ·材料 | 第75-76页 |
| ·药品和试剂 | 第75-76页 |
| ·主要试验仪器 | 第76页 |
| ·试验动物和细胞株 | 第76页 |
| ·方法 | 第76-79页 |
| ·荷小鼠U14 宫颈癌实体瘤模型的建立 | 第76页 |
| ·试验动物的分组和处理 | 第76页 |
| ·SNL-P1a 处理对肿瘤组织及免疫器官重量的影响 | 第76-77页 |
| ·SNL-P1a 处理对荷瘤小鼠外周血单核淋巴细胞亚群的影响 | 第77页 |
| ·SNL-P1a 处理对荷瘤小鼠血清IFN-γ、IL-4、IL-2 和TNF-α含量的影响 | 第77页 |
| ·SNL-P1a 处理对荷瘤小鼠胸腺、脾脏显微结构的影响 | 第77页 |
| ·TUNEL 染色和结果观察 | 第77-78页 |
| ·免疫组织化学SP 法对凋亡相关基因Bax、Bcl-2 蛋白表达水平的检测 | 第78页 |
| ·数据统计 | 第78-79页 |
| ·结果 | 第79-92页 |
| ·SNL-P1a 处理对荷瘤小鼠体重增长和瘤体重量的影响 | 第79-80页 |
| ·SNL-P1a 处理对荷瘤小鼠免疫器官重量的影响 | 第80-81页 |
| ·SNL-P1a 处理对荷瘤小鼠外周血单核淋巴细胞亚群的影响 | 第81页 |
| ·SNL-P1a 处理对荷瘤小鼠血清IFN-γ、IL-4、IL-2 和TNF-α含量的影响 | 第81-83页 |
| ·SNL-P1a 处理对荷瘤小鼠胸腺、脾脏组织结构的影响 | 第83页 |
| ·SNL-P1a 处理对荷瘤小鼠胸腺、脾脏组织细胞凋亡的影响 | 第83-87页 |
| ·SNL-P1a 处理对荷瘤小鼠胸腺组织细胞Bcl-2、Bax 蛋白表达的影响. | 第87-90页 |
| ·SNL-P1a 处理对荷瘤小鼠脾脏组织细胞Bcl-2、Bax 蛋白表达的影响. | 第90-92页 |
| ·讨论 | 第92-97页 |
| ·SNL-P1a 对荷瘤小鼠外周血单核淋巴细胞亚群的影响 | 第92-93页 |
| ·SNL-P1a 对荷瘤小鼠血清细胞因子的影响 | 第93-94页 |
| ·SNL-P1a 对免疫器官的影响 | 第94-96页 |
| ·SNL-P1a 对免疫器官保护作用机制 | 第96-97页 |
| ·本章小结 | 第97-98页 |
| 第5章 龙葵多糖亚级分1a 对荷瘤小鼠抗氧化防御体系的影响 | 第98-117页 |
| ·材料 | 第98-99页 |
| ·药品和试剂 | 第98-99页 |
| ·主要试验仪器 | 第99页 |
| ·试验动物和细胞株 | 第99页 |
| ·方法 | 第99-101页 |
| ·荷小鼠U14 宫颈癌实体瘤模型的建立 | 第99页 |
| ·试验动物的分组和处理 | 第99-100页 |
| ·荷瘤小鼠血清抗氧化能力的测定 | 第100页 |
| ·荷瘤小鼠肝、肾、胸腺、脾脏和肿瘤组织抗氧化能力测定 | 第100页 |
| ·荷瘤小鼠血清AKP、LDH 水平测定 | 第100页 |
| ·SNL-P1a 体外清除·OH 自由基能力的测定 | 第100-101页 |
| ·SNL-P1a 体外清除O_2~(·-)自由基能力的测定 | 第101页 |
| ·SNL-P1a 体外清除DPPH 自由基能力的测定 | 第101页 |
| ·数据统计 | 第101页 |
| ·结果 | 第101-110页 |
| ·SNL-P1a 处理对荷瘤小鼠体重的影响 | 第101-102页 |
| ·SNL-P1a 对U14 宫颈癌生长的影响 | 第102-103页 |
| ·SNL-P1a 对荷瘤小鼠血清抗氧化能力的影响 | 第103-104页 |
| ·SNL-P1a 对肝、肾组织抗氧化能力的影响 | 第104-105页 |
| ·SNL-P1a 对荷瘤小鼠胸腺、脾脏抗氧化能力的影响 | 第105-107页 |
| ·SNL-P1a 对荷瘤小鼠肿瘤组织抗氧化能力的影响 | 第107页 |
| ·SNL-P1a 对荷瘤小鼠血清AKP、LDH 活性的影响 | 第107-108页 |
| ·SNL-P1a 体外对·OH 自由基的清除作用 | 第108-109页 |
| ·SNL-P1a 体外对0_2~(·-)自由基的清除作用 | 第109-110页 |
| ·SNL-P1a 体外对DPPH 自由基的清除作用 | 第110页 |
| ·讨论 | 第110-115页 |
| ·SNL-P1a 对荷瘤小鼠血清抗氧化防御体系的影响 | 第111-112页 |
| ·SNL-P1a 对肝脏、肾脏抗氧化防御体系的影响 | 第112页 |
| ·SNL-P1a 对胸腺、脾脏组织抗氧化防御体系的影响 | 第112-113页 |
| ·SNL-P1a 对肿瘤组织抗氧化防御体系的影响 | 第113页 |
| ·SNL-P1a 对荷瘤小鼠血清AKP 和LDH 活性的影响 | 第113-114页 |
| ·SNL-P1a 体外对自由基的清除作用 | 第114-115页 |
| ·本章小结 | 第115-117页 |
| 第6章 龙葵多糖亚级分1a 干扰细胞周期及诱导肿瘤细胞凋亡机制的研究 | 第117-150页 |
| ·材料 | 第117-119页 |
| ·药品和试剂 | 第117-118页 |
| ·主要试验仪器 | 第118页 |
| ·试验动物和细胞株 | 第118-119页 |
| ·方法 | 第119-124页 |
| ·荷小鼠U14 宫颈癌实体瘤模型的建立 | 第119页 |
| ·试验动物的分组和处理 | 第119页 |
| ·SNL-P1a 对移植性小鼠宫颈癌U14 的抑制作用 | 第119页 |
| ·SNL-P1a 处理对小鼠肿瘤组织细胞周期的影响 | 第119-120页 |
| ·SNL-P1a 处理对小鼠肿瘤组织形态的影响 | 第120页 |
| ·TUNEL 染色和结果观察 | 第120页 |
| ·AnnexinⅤ-FITC/PI 双标流式细胞术检测凋亡 | 第120-121页 |
| ·免疫组织化学SP 法对肿瘤组织相关基因蛋白水平的检测 | 第121页 |
| ·RT-PCR 对肿瘤相关基因m RNA 表达水平的检测 | 第121-123页 |
| ·肿瘤组织线粒体膜电位(Δψm)的测定 | 第123页 |
| ·肿瘤组织胞浆内[Ca~(2+)]的测定 | 第123-124页 |
| ·流式细胞术对肿瘤组织特异性蛋白的检测 | 第124页 |
| ·数据统计 | 第124页 |
| ·结果 | 第124-142页 |
| ·SNL-P1a 处理对荷瘤小鼠肿瘤生长的影响 | 第124-125页 |
| ·SNL-P1a 处理对小鼠肿瘤组织细胞周期的影响 | 第125-126页 |
| ·SNL-P1a 处理对小鼠肿瘤组织显微结构的影响 | 第126-127页 |
| ·SNL-P1a 处理对肿瘤组织超微结构的影响 | 第127-128页 |
| ·TUNEL 染色检测SNL-P1a 对肿瘤凋亡细胞数量的影响 | 第128-129页 |
| ·AnnexinⅤ-FITC/PI 双标检测凋亡结果 | 第129-130页 |
| ·SNL-P1a 对肿瘤组织细胞Δψm 的影响 | 第130-132页 |
| ·SNL-P1a 对肿瘤组织细胞内游离[Ca~(2+)]的影响 | 第132页 |
| ·免疫组化法对小鼠肿瘤组织肿瘤相关蛋白的检测结果 | 第132-138页 |
| ·流式细胞术对小鼠肿瘤组织肿瘤相关蛋白表达的分析结果 | 第138-140页 |
| ·SNL-P1a 对肿瘤组织Bcl-2 和Bax 基因mRNA 表达水平的影响 | 第140-142页 |
| ·讨论 | 第142-148页 |
| ·SNL-P1a 对小鼠肿瘤组织细胞周期及PCNA 和c-myc 蛋白表达的影响 | 第142-143页 |
| ·SNL-P1a 处理对肿瘤组织细胞周期相关蛋白的影响 | 第143-145页 |
| ·SNL-P1a 处理诱导细胞凋亡的发生 | 第145-146页 |
| ·SNL-P1a 处理对肿瘤组织细胞凋亡相关蛋白的影响 | 第146-148页 |
| ·本章小结 | 第148-150页 |
| 结论 | 第150-152页 |
| 附录 缩略语表 | 第152-154页 |
| 参考文献 | 第154-172页 |
| 攻读博士学位期间承担的科研任务与主要成果 | 第172-174页 |
| 致谢 | 第174-175页 |
| 作者简介 | 第175页 |
