摘要 | 第1-8页 |
Abstract | 第8-10页 |
缩略语表 | 第10-15页 |
第一章 文献综述 | 第15-32页 |
1 植物硫化激素(Phytosulfokine,PSK)的简介 | 第15-18页 |
·PSK的生理活性 | 第15-17页 |
·促进悬浮细胞生长和增殖 | 第15-16页 |
·调节花粉萌发 | 第16页 |
·促进遗传转化 | 第16页 |
·刺激次生物质产生 | 第16页 |
·提高植物抗性 | 第16页 |
·促进细胞分化和体细胞胚的形成 | 第16-17页 |
·PSK的结构与活性 | 第17-18页 |
2 多肽的化学合成方法 | 第18-27页 |
·多肽的液相合成 | 第19页 |
·多肽的固相合成 | 第19页 |
·氨基酸的保护 | 第19-23页 |
·氨基保护基 | 第20-21页 |
·羧基保护基 | 第21-22页 |
·侧链保护基 | 第22-23页 |
·肽缩合试剂 | 第23-27页 |
·碳二亚胺正离子型缩合剂 | 第24页 |
·脲正离子型缩合剂 | 第24-25页 |
·卤正离子型试剂和磷正离子型合剂 | 第25-26页 |
·其它缩合试剂 | 第26-27页 |
·溶剂的选择 | 第27页 |
3 酪氨酸硫酸化 | 第27-28页 |
4 [1-3]PSK化学液相合成 | 第28-32页 |
·[1-3]PSK化学合成设计 | 第28-30页 |
·[1-3]PSK化学合成的目的、意义 | 第30-32页 |
第二章 氨基酸的保护 | 第32-45页 |
1.材料与方法 | 第33-37页 |
·实验材料、试剂与仪器 | 第33-34页 |
·实验材料、试剂 | 第33页 |
·实验仪器设备 | 第33-34页 |
·实验方法 | 第34-37页 |
·L-Tyr的Fmoc保护条件优化 | 第34-35页 |
·L-Ile的Fmoc保护 | 第35页 |
·L-Thr的Fmoc保护 | 第35页 |
·羧基保护 | 第35-36页 |
·毛细管熔点测定法 | 第36-37页 |
2 结果与讨论 | 第37-44页 |
·L-Tyr的Fmoc保护条件优化 | 第37-39页 |
·低温反应条件优化 | 第37-38页 |
·室温反应条件优化 | 第38-39页 |
·L-Ile与L-Thr的Fmoc保护 | 第39页 |
·L-Tyr的tBu保护 | 第39-40页 |
·红外图谱结果 | 第40-43页 |
·熔点测定结果 | 第43-44页 |
3 结论 | 第44-45页 |
第三章 酪氨酸硫酸化 | 第45-53页 |
1 实验材料与方法 | 第45-47页 |
·实验材料、试剂 | 第45页 |
·仪器设备 | 第45页 |
·实验方法 | 第45-47页 |
·SO_3-DMF的制备 | 第45-46页 |
·L-Fmoc-Tyr(SO_3Na)-OH与L-Fmoc-Thr(SO_3Na)-OH的制备 | 第46页 |
·L-Fmoc-Tyr(SO_3Na)-OH的稳定性 | 第46-47页 |
2 结果与讨论 | 第47-51页 |
·硫酸化试剂SO_3-DMF的制备 | 第47页 |
·L-Fmoc-Tyr(SO_3Na)-OH与L-Fmoc-Thr(SO_3Na)-OH的制备 | 第47-49页 |
·酸对L-Fmoc-Tyr(SO_3Na)-OH稳定性的影响 | 第49-50页 |
·温度对L-Fmoc-Tyr(SO_3Na)-OH稳定性的影响 | 第50-51页 |
·L-Fmoc-Tyr(SO_3Na)-OH与L-Fmoc-Thr(SO_3Na)-OH稳定性的比较 | 第51页 |
3 结论 | 第51-53页 |
第四章[1-3]PSK的液相合成 | 第53-59页 |
1 实验材料与方法 | 第54-56页 |
·实验材料 | 第54页 |
·实验方法 | 第54-56页 |
·二肽Fmoc-Ile-Tyr-OtBu的缩合 | 第54页 |
·Fmoc脱除实验 | 第54-55页 |
·三肽Fmoc-Tyr-Ile-Tyr-OtBu的缩合 | 第55页 |
·tBu保护基脱除实验 | 第55页 |
·三肽Fmoc-Tyr-Ile-Tyr-OH的硫酸化 | 第55-56页 |
·三肽Tyr(SO_3Na)-Ile-Tyr(SO_3Na)-OH的制备 | 第56页 |
·液相色谱分析 | 第56页 |
2 结果与讨论 | 第56-57页 |
·Fmoc保护基的脱除 | 第56-57页 |
·O-tBu保护基的脱除 | 第57页 |
·肽的合成 | 第57页 |
3 结论 | 第57-59页 |
参考文献 | 第59-69页 |
致谢 | 第69-70页 |
附录 | 第70-79页 |