摘要 | 第1-6页 |
ABSTRACT | 第6-8页 |
缩略词及英汉对照 | 第8-14页 |
前言 | 第14-16页 |
第一部分 文献综述 | 第16-24页 |
中药有效成分干扰血栓形成研究概况 | 第16-24页 |
1 抑制血液凝固 | 第16-18页 |
·抑制凝血酶的作用 | 第17页 |
·促进纤维蛋白溶解 | 第17-18页 |
2 抑制血小板的形成 | 第18-21页 |
·抑制血小板花生四烯酸代谢(AA)的途径 | 第18-19页 |
·增加血小板内环化腺苷磷酸(cAMP) | 第19页 |
·血小板糖蛋白复合物Ⅱb/Ⅲa(GPⅡb/Ⅲa)受体拮抗剂 | 第19-20页 |
·血小板激活因子(PAF)受体拮抗剂 | 第20页 |
·一氧化氮(NO)供体 | 第20-21页 |
3 改善内皮细胞功能 | 第21-23页 |
·促进一氧化氮(NO)和前列腺素I_2(PGI_2)的释放 | 第21-22页 |
·抑制血管性假血友病因子(vWF)和内皮素(ET-1)的释放 | 第22-23页 |
4 展望 | 第23-24页 |
第二部分 本试验研究的内容、目的和意义 | 第24-25页 |
第三部分 试验研究内容 | 第25-57页 |
第一章 走马胎提取物中总多糖的含量测定 | 第25-30页 |
1 材料和仪器 | 第25页 |
·药品和仪器 | 第25页 |
·分析仪器 | 第25页 |
2 方法与结果 | 第25-28页 |
·溶液的配制 | 第25-26页 |
·测定方法 | 第26页 |
·方法学考察 | 第26-28页 |
·线性考察 | 第26-27页 |
·精密度试验 | 第27页 |
·重现性试验 | 第27页 |
·样品溶液的稳定性 | 第27页 |
·回收率试验 | 第27-28页 |
3 讨论 | 第28-30页 |
·除蛋白试剂的确定 | 第28页 |
·最佳波长的选择 | 第28-30页 |
第二章 走马胎提取物中总皂苷的含量测定 | 第30-35页 |
1 材料和仪器 | 第30页 |
·药品和仪器 | 第30页 |
·分析仪器 | 第30页 |
2 方法与结果 | 第30-33页 |
·溶液的配制 | 第30页 |
·测定方法 | 第30-31页 |
·方法学考察 | 第31-33页 |
·线性考察 | 第31页 |
·精密度试验 | 第31-32页 |
·重现性试验 | 第32页 |
·样品溶液的稳定性 | 第32页 |
·回收率试验 | 第32-33页 |
3 讨论 | 第33-35页 |
·比色条件的确定 | 第33-34页 |
·最佳显色时间的确定 | 第33-34页 |
·最佳显色温度的确定 | 第34页 |
·最佳波长的选择 | 第34-35页 |
第三章 走马胎提取物中总生物碱的含量测定 | 第35-40页 |
1.材料和仪器 | 第35页 |
·药品和仪器 | 第35页 |
·分析仪器 | 第35页 |
2 方法与结果 | 第35-38页 |
·溶液的配制 | 第35-36页 |
·测定方法 | 第36页 |
·方法学考察 | 第36-38页 |
·线性考察 | 第36-37页 |
·精密度试验 | 第37页 |
·重现性试验 | 第37页 |
·样品溶液的稳定性 | 第37页 |
·回收率试验 | 第37-38页 |
3 讨论 | 第38-40页 |
·比色条件的确定 | 第38-39页 |
·缓冲溶液pH值的确定 | 第38页 |
·酸性染料用量的确定 | 第38-39页 |
·最佳波长的选择 | 第39-40页 |
第四章 走马胎提取物的成分检测 | 第40-41页 |
1 药品和试剂 | 第40页 |
2 走马胎多糖的检测方法与结果 | 第40页 |
3 走马胎皂苷的检测方法与结果 | 第40页 |
4 走马胎生物碱的检测方法与结果 | 第40-41页 |
第五章 走马胎影响血栓形成的有效成分筛选 | 第41-46页 |
1 材料 | 第41-42页 |
·药品与试剂 | 第41页 |
·溶液配制 | 第41-42页 |
2 试验方法 | 第42-43页 |
·大鼠体内活化部分凝血活酶时间(activated partial thromboplastin time,APrr)的测定 | 第42页 |
·大鼠体内凝血酶原时间(prothrombin time,PT)的测定 | 第42页 |
·大鼠体内凝血酶时间(thrombin time,TT)的测定 | 第42页 |
·对复钙凝血时间(recalcification time,RT)的测定 | 第42页 |
·走马胎提取物对凝血酶活性的抑制试验 | 第42-43页 |
·血浆和提取物 | 第42-43页 |
·提取物和凝血酶 | 第43页 |
·样品抗凝血性能的评价 | 第43页 |
3 结果与分析 | 第43-44页 |
·走马胎提取物对APTT、PT、RT的影响 | 第43-44页 |
·走马胎提取物对凝血酶活性的抑制试验 | 第44页 |
·走马胎提取物抗凝血性能的评价 | 第44页 |
4 讨论 | 第44-46页 |
第六章 走马胎多糖对SD大鼠体内血栓形成和肺损伤的影响 | 第46-57页 |
1 试验材料 | 第46页 |
·药品与试剂 | 第46页 |
·试验动物 | 第46页 |
·主要仪器 | 第46页 |
2 试验方法 | 第46-49页 |
·模型复制及给药 | 第46-47页 |
·样品处理及观察指标 | 第47页 |
·检测方法 | 第47页 |
·走马胎提取液对体内凝血系统的影响 | 第47页 |
·大鼠体内Fg含量的测定 | 第47-48页 |
·纤维蛋白制备 | 第47-48页 |
·纤维蛋白含量测定 | 第48页 |
·大鼠体内血液生理指标的测定 | 第48页 |
·肺组织病理光镜检查 | 第48页 |
·统计方法 | 第48-49页 |
3 结果与分析 | 第49-53页 |
·走马胎多糖对大鼠体内PT、TT、APTT、RT和Fg的影响 | 第49页 |
·走马胎多糖对大鼠体内RBC、HGB、MCV、HCT和WBC影响 | 第49-50页 |
·走马胎多糖对大鼠体内RDW、MPV、PDW、PCT和LPCR的影响 | 第50页 |
·走马胎多糖对大鼠体内LYM、LYM%、GRAN、GRAN%和RDW%的影响 | 第50-51页 |
·走马胎多糖对大鼠体内MCHC、MCH、MID%和MID的影响 | 第51页 |
·病理变化结果 | 第51-53页 |
·病理剖检变化 | 第51-52页 |
·病理组织学变化 | 第52-53页 |
4 讨论 | 第53-57页 |
·SD大鼠皮下注射Adr形成肺组织损伤模型的评价 | 第53-54页 |
·走马胎提取液对大鼠体内凝血系统的作用 | 第54-55页 |
·走马胎提取液对大鼠体内血液黏度的作用 | 第55-57页 |
第四部分 结论 | 第57-58页 |
参考文献 | 第58-65页 |
致谢 | 第65页 |