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走马胎有效成分的提取及走马胎多糖对SD大鼠体内血栓形成影响的初步研究

摘要第1-6页
ABSTRACT第6-8页
缩略词及英汉对照第8-14页
前言第14-16页
第一部分 文献综述第16-24页
 中药有效成分干扰血栓形成研究概况第16-24页
  1 抑制血液凝固第16-18页
   ·抑制凝血酶的作用第17页
   ·促进纤维蛋白溶解第17-18页
  2 抑制血小板的形成第18-21页
   ·抑制血小板花生四烯酸代谢(AA)的途径第18-19页
   ·增加血小板内环化腺苷磷酸(cAMP)第19页
   ·血小板糖蛋白复合物Ⅱb/Ⅲa(GPⅡb/Ⅲa)受体拮抗剂第19-20页
   ·血小板激活因子(PAF)受体拮抗剂第20页
   ·一氧化氮(NO)供体第20-21页
  3 改善内皮细胞功能第21-23页
   ·促进一氧化氮(NO)和前列腺素I_2(PGI_2)的释放第21-22页
   ·抑制血管性假血友病因子(vWF)和内皮素(ET-1)的释放第22-23页
  4 展望第23-24页
第二部分 本试验研究的内容、目的和意义第24-25页
第三部分 试验研究内容第25-57页
 第一章 走马胎提取物中总多糖的含量测定第25-30页
  1 材料和仪器第25页
   ·药品和仪器第25页
   ·分析仪器第25页
  2 方法与结果第25-28页
   ·溶液的配制第25-26页
   ·测定方法第26页
   ·方法学考察第26-28页
     ·线性考察第26-27页
     ·精密度试验第27页
     ·重现性试验第27页
     ·样品溶液的稳定性第27页
     ·回收率试验第27-28页
  3 讨论第28-30页
   ·除蛋白试剂的确定第28页
   ·最佳波长的选择第28-30页
 第二章 走马胎提取物中总皂苷的含量测定第30-35页
  1 材料和仪器第30页
   ·药品和仪器第30页
   ·分析仪器第30页
  2 方法与结果第30-33页
   ·溶液的配制第30页
   ·测定方法第30-31页
   ·方法学考察第31-33页
     ·线性考察第31页
     ·精密度试验第31-32页
     ·重现性试验第32页
     ·样品溶液的稳定性第32页
     ·回收率试验第32-33页
  3 讨论第33-35页
   ·比色条件的确定第33-34页
     ·最佳显色时间的确定第33-34页
     ·最佳显色温度的确定第34页
   ·最佳波长的选择第34-35页
 第三章 走马胎提取物中总生物碱的含量测定第35-40页
  1.材料和仪器第35页
   ·药品和仪器第35页
   ·分析仪器第35页
  2 方法与结果第35-38页
   ·溶液的配制第35-36页
   ·测定方法第36页
   ·方法学考察第36-38页
     ·线性考察第36-37页
     ·精密度试验第37页
     ·重现性试验第37页
     ·样品溶液的稳定性第37页
     ·回收率试验第37-38页
  3 讨论第38-40页
   ·比色条件的确定第38-39页
     ·缓冲溶液pH值的确定第38页
     ·酸性染料用量的确定第38-39页
   ·最佳波长的选择第39-40页
 第四章 走马胎提取物的成分检测第40-41页
  1 药品和试剂第40页
  2 走马胎多糖的检测方法与结果第40页
  3 走马胎皂苷的检测方法与结果第40页
  4 走马胎生物碱的检测方法与结果第40-41页
 第五章 走马胎影响血栓形成的有效成分筛选第41-46页
  1 材料第41-42页
   ·药品与试剂第41页
   ·溶液配制第41-42页
  2 试验方法第42-43页
   ·大鼠体内活化部分凝血活酶时间(activated partial thromboplastin time,APrr)的测定第42页
   ·大鼠体内凝血酶原时间(prothrombin time,PT)的测定第42页
   ·大鼠体内凝血酶时间(thrombin time,TT)的测定第42页
   ·对复钙凝血时间(recalcification time,RT)的测定第42页
   ·走马胎提取物对凝血酶活性的抑制试验第42-43页
     ·血浆和提取物第42-43页
     ·提取物和凝血酶第43页
   ·样品抗凝血性能的评价第43页
  3 结果与分析第43-44页
   ·走马胎提取物对APTT、PT、RT的影响第43-44页
   ·走马胎提取物对凝血酶活性的抑制试验第44页
   ·走马胎提取物抗凝血性能的评价第44页
  4 讨论第44-46页
 第六章 走马胎多糖对SD大鼠体内血栓形成和肺损伤的影响第46-57页
  1 试验材料第46页
   ·药品与试剂第46页
   ·试验动物第46页
   ·主要仪器第46页
  2 试验方法第46-49页
   ·模型复制及给药第46-47页
   ·样品处理及观察指标第47页
   ·检测方法第47页
   ·走马胎提取液对体内凝血系统的影响第47页
   ·大鼠体内Fg含量的测定第47-48页
     ·纤维蛋白制备第47-48页
     ·纤维蛋白含量测定第48页
   ·大鼠体内血液生理指标的测定第48页
   ·肺组织病理光镜检查第48页
   ·统计方法第48-49页
  3 结果与分析第49-53页
   ·走马胎多糖对大鼠体内PT、TT、APTT、RT和Fg的影响第49页
   ·走马胎多糖对大鼠体内RBC、HGB、MCV、HCT和WBC影响第49-50页
   ·走马胎多糖对大鼠体内RDW、MPV、PDW、PCT和LPCR的影响第50页
   ·走马胎多糖对大鼠体内LYM、LYM%、GRAN、GRAN%和RDW%的影响第50-51页
   ·走马胎多糖对大鼠体内MCHC、MCH、MID%和MID的影响第51页
   ·病理变化结果第51-53页
     ·病理剖检变化第51-52页
     ·病理组织学变化第52-53页
  4 讨论第53-57页
   ·SD大鼠皮下注射Adr形成肺组织损伤模型的评价第53-54页
   ·走马胎提取液对大鼠体内凝血系统的作用第54-55页
   ·走马胎提取液对大鼠体内血液黏度的作用第55-57页
第四部分 结论第57-58页
参考文献第58-65页
致谢第65页

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