| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 前言 | 第11-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-24页 |
| ·手性及手性药物概述 | 第12-13页 |
| ·手性醇在制药领域的应用及其合成方法 | 第13-14页 |
| ·手性醇在制药领域的应用 | 第13页 |
| ·手性醇的合成 | 第13-14页 |
| ·活性微生物细胞催化羰基化合物不对称还原合成手性醇 | 第14-20页 |
| ·活性微生物细胞催化不对称还原的特点 | 第14-15页 |
| ·微生物催化羰基不对称还原合成手性醇的反应机理 | 第15-16页 |
| ·可催化不对称还原的微生物种类 | 第16页 |
| ·控制反应效率和立体选择性的主要方法 | 第16-17页 |
| ·不对称还原前手性芳香族羰基化合物微生物筛选的研究进展 | 第17-20页 |
| ·催化羰基化合物不对称还原合成手性醇的氧化还原酶 | 第20-22页 |
| ·可催化不对称还原的氧化还原酶 | 第20-22页 |
| ·催化羰基不对称还原的氧化还原酶的分离纯化 | 第22页 |
| ·本论文的主要研究内容与思路 | 第22-24页 |
| 第二章 不对称还原前手性芳香酮微生物的筛选及反应特性 | 第24-35页 |
| ·试剂与材料 | 第24-25页 |
| ·主要试剂 | 第24页 |
| ·土壤样品来源 | 第24页 |
| ·培养基 | 第24-25页 |
| ·实验方法 | 第25-28页 |
| ·土壤样品的稀释 | 第25页 |
| ·微生物的筛选方法 | 第25页 |
| ·高效微生物不对称还原苯乙酮的反应特性研究 | 第25-27页 |
| ·分析检测 | 第27-28页 |
| ·结果与讨论 | 第28-35页 |
| ·微生物的筛选 | 第28-29页 |
| ·菌株#1-2 不对称还原苯乙酮的反应特性研究 | 第29-33页 |
| ·小结 | 第33-35页 |
| 第三章 高效催化苯乙酮不对称还原菌株#1-2 的鉴定 | 第35-49页 |
| ·试剂与材料 | 第35-37页 |
| ·主要试剂 | 第35页 |
| ·主要溶液 | 第35页 |
| ·菌种来源 | 第35-36页 |
| ·培养基 | 第36-37页 |
| ·实验方法 | 第37-41页 |
| ·形态特征观察 | 第37-38页 |
| ·培养特征观察 | 第38页 |
| ·生理生化特性鉴定 | 第38-40页 |
| ·菌体分子遗传学鉴定:16S rDNA 鉴定 | 第40-41页 |
| ·序列比对 | 第41页 |
| ·系统发育分析 | 第41页 |
| ·结果与讨论 | 第41-48页 |
| ·菌株的形态学特征 | 第41-43页 |
| ·菌株的培养特征 | 第43-44页 |
| ·菌株的生理生化特征 | 第44页 |
| ·菌株的分子生物学鉴定:16S rDNA 鉴定 | 第44-47页 |
| ·序列比对 | 第47页 |
| ·系统发育树的构建 | 第47-48页 |
| ·小结 | 第48-49页 |
| 第四章 Microbacterium sp.中羰基还原酶的分离纯化及酶学性质研究 | 第49-63页 |
| ·材料与方法 | 第49-54页 |
| ·菌种与培养基 | 第49页 |
| ·主要试剂 | 第49页 |
| ·羰基还原酶的分离纯化 | 第49-50页 |
| ·蛋白质浓度测定方法 | 第50-51页 |
| ·酶活测定方法 | 第51-52页 |
| ·酶纯度检测 | 第52-53页 |
| ·羰基还原酶酶学性质的研究 | 第53-54页 |
| ·结果与讨论 | 第54-62页 |
| ·牛血清蛋白标准曲线 | 第54页 |
| ·超声波破碎条件的确定 | 第54-55页 |
| ·羰基还原酶的分离纯化 | 第55-57页 |
| ·酶的纯化结果 | 第57页 |
| ·酶的纯度检测 | 第57-58页 |
| ·羰基还原酶酶学性质的研究 | 第58-62页 |
| ·小结 | 第62-63页 |
| 第五章 结论与展望 | 第63-65页 |
| ·结论 | 第63-64页 |
| ·建议和展望 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-71页 |
| 附录 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72页 |
