| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 前言 | 第9-23页 |
| 1.1 课题研究背景 | 第9-10页 |
| 1.2 裂殖壶菌的概述 | 第10-13页 |
| 1.2.1 裂殖壶菌的简介 | 第10页 |
| 1.2.2 裂殖壶菌的研究与应用 | 第10-13页 |
| 1.2.2.1 裂殖壶菌DHA的应用 | 第10-12页 |
| 1.2.2.2 裂殖壶菌藻粕的研究与应用 | 第12-13页 |
| 1.3 生物活性肽的概述 | 第13-16页 |
| 1.3.1 生物活性肽的简介 | 第13-14页 |
| 1.3.1.1 植物来源的生物活性肽 | 第14页 |
| 1.3.1.2 动物来源的生物活性肽 | 第14页 |
| 1.3.1.3 微生物来源的生物活性肽 | 第14页 |
| 1.3.2 生物活性肽的应用 | 第14-16页 |
| 1.3.2.1 在饲料方面的应用 | 第15页 |
| 1.3.2.2 在保健品方面的应用 | 第15页 |
| 1.3.2.3 在其他方面的应用 | 第15-16页 |
| 1.4 生物活性肽的制备方法 | 第16-17页 |
| 1.4.1 直接提取法 | 第16页 |
| 1.4.2 合成法 | 第16页 |
| 1.4.3 蛋白酶解法 | 第16-17页 |
| 1.5 生物活性肽的干燥方法 | 第17-19页 |
| 1.5.1 流化床干燥法 | 第17页 |
| 1.5.2 真空冷冻干燥法 | 第17-18页 |
| 1.5.3 喷雾干燥法 | 第18-19页 |
| 1.5.3.1 喷雾干燥工艺的原理 | 第18页 |
| 1.5.3.2 喷雾干燥工艺的特点 | 第18-19页 |
| 1.5.3.3 喷雾干燥工艺的在各个领域的应用 | 第19页 |
| 1.6 生物活性肽的活性评定 | 第19-20页 |
| 1.7 课题研究的来源、目的、主要内容及创新性和技术路线 | 第20-23页 |
| 1.7.1 课题研究的来源和目的 | 第20页 |
| 1.7.2 课题研究的主要内容 | 第20-21页 |
| 1.7.4 课题研究的创新性 | 第21-22页 |
| 1.7.3 课题的技术路线 | 第22-23页 |
| 第二章 材料与方法 | 第23-36页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第23-27页 |
| 2.1.1 实验仪器设备表 | 第23-24页 |
| 2.1.2 实验材料及动物 | 第24-25页 |
| 2.1.3 实验试剂及药品 | 第25-26页 |
| 2.1.4 实验所需试剂的配制 | 第26-27页 |
| 2.1.4.1 藻粕酶解过程所需试剂溶液配制 | 第26页 |
| 2.1.4.2 细胞培养过程所需试剂溶液配制 | 第26-27页 |
| 2.1.4.3 小鼠肠道炎症实验过程中所需试剂溶液配制 | 第27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-36页 |
| 2.2.1 裂殖壶菌生物活性肽的制备 | 第27页 |
| 2.2.2 检测与分析方法 | 第27-28页 |
| 2.2.2.1 酶解实验中的得率测定 | 第27-28页 |
| 2.2.2.2 喷雾干燥工艺优化实验的指标及测定 | 第28页 |
| 2.2.2.3 质谱参数 | 第28页 |
| 2.2.3 酶解生产工艺条件的确立 | 第28-30页 |
| 2.2.3.1 底物浓度对裂殖壶菌生物活性肽得率的影响 | 第28页 |
| 2.2.3.2 初始pH值对裂殖壶菌生物活性肽得率的影响 | 第28-29页 |
| 2.2.3.3 加酶量对裂殖壶菌生物活性肽得率的影响 | 第29页 |
| 2.2.3.4 酶解时间对裂殖壶菌生物活性肽得率的影响 | 第29页 |
| 2.2.3.5 酶解温度对裂殖壶菌生物活性肽得率的影响 | 第29页 |
| 2.2.3.6 正交试验设计 | 第29-30页 |
| 2.2.4 喷雾干燥工艺参数的确立 | 第30-31页 |
| 2.2.4.1 进料速度对裂殖壶菌生物活性肽喷雾干燥效果的影响 | 第30页 |
| 2.2.4.2 进风量对裂殖壶菌生物活性肽喷雾干燥效果的影响 | 第30页 |
| 2.2.4.3 进风温度对裂殖壶菌生物活性肽喷雾干燥效果的影响 | 第30-31页 |
| 2.2.4.4 进料浓度对裂殖壶菌生物活性肽喷雾干燥效果的影响 | 第31页 |
| 2.2.4.5 喷雾转速对裂殖壶菌生物活性肽喷雾干燥效果的影响 | 第31页 |
| 2.2.4.6 响应面试验设计 | 第31页 |
| 2.2.5 裂殖壶菌生物活性肽的功效检测 | 第31-36页 |
| 2.2.5.1 生物活性肽对3T3细胞生长的生物活性验证 | 第31-33页 |
| 2.2.5.2 DSS肠道炎症模型的建立 | 第33页 |
| 2.2.5.3 肠炎小鼠的体重分析方法 | 第33页 |
| 2.2.5.4 肠炎小鼠的便血程度分析方法 | 第33-34页 |
| 2.2.5.5 肠炎小鼠的解剖及肠道预处理 | 第34页 |
| 2.2.5.6 肠炎小鼠的疾病临床评分 | 第34-36页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第36-59页 |
| 3.1 裂殖壶菌生物活性肽生产工艺条件的确立 | 第36-50页 |
| 3.1.1 酶解生产工艺条件的确立 | 第36-42页 |
| 3.1.1.1 底物浓度对裂殖壶菌生物活性肽得率的影响 | 第36-37页 |
| 3.1.1.2 初始pH值对裂殖壶菌生物活性肽得率的影响 | 第37-38页 |
| 3.1.1.3 加酶量对裂殖壶菌生物活性肽得率的影响 | 第38页 |
| 3.1.1.4 酶解时间对裂殖壶菌生物活性肽得率的影响 | 第38-39页 |
| 3.1.1.5 酶解温度对裂殖壶菌生物活性肽得率的影响 | 第39-40页 |
| 3.1.1.6 正交试验设计 | 第40-42页 |
| 3.1.2 喷雾干燥工艺参数的确立 | 第42-50页 |
| 3.1.2.1 进料速度对裂殖壶菌生物活性肽喷雾干燥效果的影响 | 第42-43页 |
| 3.1.2.2 进风量对裂殖壶菌生物活性肽喷雾干燥效果的影响 | 第43-44页 |
| 3.1.2.3 进风温度对裂殖壶菌生物活性肽喷雾干燥效果的影响 | 第44页 |
| 3.1.2.4 进料浓度对裂殖壶菌生物活性肽喷雾干燥效果的影响 | 第44-45页 |
| 3.1.2.5 喷雾转速对裂殖壶菌生物活性肽喷雾干燥效果的影响 | 第45-47页 |
| 3.1.2.6 响应面优化试验 | 第47-50页 |
| 3.1.3 中试实验 | 第50页 |
| 3.2 裂殖壶菌生物活性肽的活性检测 | 第50-59页 |
| 3.2.1 裂殖壶菌生物活性肽的体外活性检测 | 第51-54页 |
| 3.2.1.1 培养过程中细胞显微形态对比 | 第51-52页 |
| 3.2.1.2 不同培养时间细胞存活结果 | 第52-53页 |
| 3.2.1.3 不同培养时间细胞增殖率结果 | 第53-54页 |
| 3.2.2 裂殖壶菌生物活性肽的体内活性检测 | 第54-59页 |
| 3.2.2.1 小鼠体重变化结果分析 | 第54-56页 |
| 3.2.2.2 小鼠便血情况结果分析 | 第56-57页 |
| 3.2.2.3 小鼠疾病临床评分结果分析 | 第57页 |
| 3.2.2.4 小鼠肠道形态结果分析 | 第57-59页 |
| 主要结论与展望 | 第59-61页 |
| 结论 | 第59-60页 |
| 展望 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 附录 | 第67-68页 |
| 个人简历 | 第68-69页 |
| 研究成果 | 第69页 |
