| 摘要 | 第6-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 符号说明 | 第12-13页 |
| 第一部分 文献综述 | 第13-30页 |
| 综述一 慢性脑缺血所致认知障碍的中医研究进展 | 第13-21页 |
| 参考文献 | 第18-21页 |
| 综述二 神经营养因子在慢性脑缺血中的作用研究 | 第21-30页 |
| 参考文献 | 第26-30页 |
| 前言 | 第30-33页 |
| 参考文献 | 第32-33页 |
| 第二部分 实验研究 | 第33-68页 |
| 实验一 精制清开灵对模型大鼠学习记忆及海马神经元形态的影响 | 第33-44页 |
| 前言 | 第33页 |
| 1. 实验材料 | 第33-34页 |
| 1.1 实验动物 | 第33页 |
| 1.2 主要药品及试剂 | 第33-34页 |
| 1.3 实验器材 | 第34页 |
| 2. 实验方法 | 第34-36页 |
| 2.1 动物分组 | 第34页 |
| 2.2 慢性脑缺血大鼠模型的制备 | 第34页 |
| 2.3 灌胃给药 | 第34-35页 |
| 2.4 水迷宫测定实验 | 第35页 |
| 2.5 统计学处理 | 第35页 |
| 2.6 实验样品的采集及处理 | 第35-36页 |
| 2.7 制备石蜡切片 | 第36页 |
| 2.8 HE染色 | 第36页 |
| 3. 实验结果 | 第36-40页 |
| 3.1 水迷宫对空间学习记忆能力的测定结果 | 第36-39页 |
| 3.2 海马CA1区HE染色结果 | 第39-40页 |
| 4. 讨论 | 第40-43页 |
| 5. 结论 | 第43-44页 |
| 实验二 精制清开灵对脑源性神经营养因子BDNF及受体TrkB表达的影响 | 第44-57页 |
| 前言 | 第44页 |
| 1. 实验材料 | 第44-45页 |
| 1.1 实验动物 | 第44页 |
| 1.2 主要药品及试剂 | 第44-45页 |
| 1.3 实验器材 | 第45页 |
| 2. 实验方法 | 第45-49页 |
| 2.1 动物分组及造模 | 第45页 |
| 2.2 免疫组化方法(IHC)测定BDNF、TrkB的表达 | 第45-46页 |
| 2.3 免疫印迹法测定大鼠海马BDNF、TrkB的蛋白含量 | 第46-47页 |
| 2.4 Real Time PCR法检测大鼠BDNF mRNA、TrkBmRNA的变化 | 第47-49页 |
| 2.5 统计分析 | 第49页 |
| 3. 实验结果 | 第49-54页 |
| 3.1 各组大鼠BDNF、TrkB免疫组化阳性表达变化 | 第49-52页 |
| 3.2 各组大鼠BDNF、TrkB蛋白表达变化 | 第52-53页 |
| 3.3 各组大鼠海马BDNF mRNA、TrkBmRNA的水平变化 | 第53-54页 |
| 4. 讨论 | 第54-56页 |
| 5. 结论 | 第56-57页 |
| 实验三 精制清开灵对模型大鼠神经生长因子NGF、NT-3的表达影响 | 第57-68页 |
| 1. 实验材料 | 第57-58页 |
| 1.1 实验动物 | 第57页 |
| 1.2 主要药品及试剂 | 第57页 |
| 1.3 实验器材 | 第57-58页 |
| 2. 实验方法 | 第58-60页 |
| 2.1 免疫组化方法测定NGF、NT-3表达 | 第58页 |
| 2.2 酶联免疫吸附实验法测定NGF、NT-3蛋白含量 | 第58页 |
| 2.3 Real Time PCR法测定NGFmRNA、NT-3 mRNA的表达 | 第58-60页 |
| 3. 实验结果 | 第60-64页 |
| 3.1 各组大鼠NGF、NT-3的免疫组化阳性表达 | 第60-62页 |
| 3.2 各组大鼠海马NGF、NT-3的蛋白含量变化 | 第62-63页 |
| 3.3 各组大鼠NGFmRNA、NT-3mRNA的水平变化 | 第63-64页 |
| 4. 讨论 | 第64-67页 |
| 5. 结论 | 第67-68页 |
| 结语 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 在校期间主要研究成果 | 第73-74页 |
| 个人简历 | 第74页 |
