| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 主要缩略语表 | 第14-15页 |
| 第1章 前言 | 第15-27页 |
| 1.1 空气颗粒物的成分及来源 | 第19-20页 |
| 1.1.1 空气颗粒物成分 | 第19-20页 |
| 1.1.2 空气颗粒物来源 | 第20页 |
| 1.2 空气颗粒物在哮喘中的研究情况 | 第20-22页 |
| 1.3 哮喘中四种T细胞的功能 | 第22-27页 |
| 1.3.1 Th2细胞 | 第23页 |
| 1.3.2 Th1细胞 | 第23-24页 |
| 1.3.3 Th17细胞 | 第24页 |
| 1.3.4 Treg细胞 | 第24-27页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第27-43页 |
| 2.1 实验材料 | 第27-31页 |
| 2.1.1 细胞系及鼠 | 第27页 |
| 2.1.2 抗体 | 第27页 |
| 2.1.3 主要试剂和耗材 | 第27-28页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第28-29页 |
| 2.1.5 主要溶液配制 | 第29-31页 |
| 2.2 实验方法 | 第31-43页 |
| 2.2.1 权重基因共表达网络分析 | 第31页 |
| 2.2.2 超几何分析找转录因子 | 第31-32页 |
| 2.2.3 鼠脾淋巴细胞分离 | 第32页 |
| 2.2.4 免疫磁珠分离CD4+CD62L+T Cell | 第32-33页 |
| 2.2.5 初始Tcell培养 | 第33页 |
| 2.2.6 T cell诱导分化 | 第33-34页 |
| 2.2.7 流式法细胞分型 | 第34页 |
| 2.2.8 ELISA检测细胞因子 | 第34-35页 |
| 2.2.9 小鼠眼球取血 | 第35页 |
| 2.2.10 小鼠中取肺泡灌洗液 | 第35-36页 |
| 2.2.11 肺组织石蜡切片制作 | 第36页 |
| 2.2.12 组织切片染色 | 第36-38页 |
| 2.2.13 RNA提取 | 第38-39页 |
| 2.2.14 逆转录 | 第39-40页 |
| 2.2.15 qPCR反应体系 | 第40页 |
| 2.2.16 qPCR反应程序 | 第40页 |
| 2.2.17 PM_(2.5)的采集及配置 | 第40-41页 |
| 2.2.18 哮喘鼠造模 | 第41页 |
| 2.2.19 相关引物设计及序列 | 第41-42页 |
| 2.2.20 数据处理 | 第42-43页 |
| 第3章 实验结果 | 第43-58页 |
| 3.1 权重基因共表达网络分析 | 第43-45页 |
| 3.2 细胞实验观察PM_(2.5)对T细胞分化的的影响 | 第45-48页 |
| 3.3 健康小鼠中验证PM_(2.5)对T细胞分化的影响 | 第48-53页 |
| 3.3.1 HE染色观察PM_(2.5)对健康小鼠炎症的影响 | 第48-49页 |
| 3.3.2 蛋白水平检测T细胞相关细胞因子的表达变化 | 第49-51页 |
| 3.3.3 转录水平检测T细胞相关因子的表达变化 | 第51-53页 |
| 3.4 体内实验验证PM_(2.5)对T细胞分化的影响 | 第53-58页 |
| 3.4.1 哮喘鼠模型的构建 | 第53-54页 |
| 3.4.2 PM_(2.5)干预下哮喘鼠模型的构建 | 第54-56页 |
| 3.4.3 转录水平检测T细胞相关因子的表达变化 | 第56-58页 |
| 第4章 讨论 | 第58-64页 |
| 4.1 PM_(2.5)影响下哮喘中Th1/Th2细胞比例失衡 | 第58-61页 |
| 4.2 PM_(2.5)影响下哮喘中Th17/Treg细胞比例失衡 | 第61-64页 |
| 结论 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-74页 |
| 致谢 | 第74页 |
