首页--农业科学论文--畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂论文--动物医学(兽医学)论文--兽医基础科学论文--家畜免疫学论文

重组牛朊蛋白的表达及其单克隆抗体的制备

致谢第4-9页
摘要第9-10页
第一章 文献综述第10-19页
    1.1 朊蛋白疾病的概述第10-14页
        1.1.1 传染性海绵状脑病流行病学第10-11页
        1.1.2 病原学第11-12页
        1.1.3 PrPc结构与生理功能第12-13页
        1.1.4 致病机制第13-14页
    1.2 朊蛋白疾病的诊断第14-17页
        1.2.1 临床症状诊断第14页
        1.2.2 组织学病理检测第14页
        1.2.3 分子病理学诊断第14-15页
        1.2.4 免疫学方法诊断第15-16页
            1.2.4.1 免疫组织化学诊断第15页
            1.2.4.2 组织印迹方法诊断第15页
            1.2.4.3 酶链免疫吸附试验诊断第15页
            1.2.4.4 蛋白印迹第15-16页
            1.2.4.5 荧光标记肽链的毛细血管电泳免疫测定第16页
        1.2.5 实验动物接种检测第16页
        1.2.6 脑脊液检测第16页
        1.2.7 蛋白错误折叠循环扩增技术检测第16-17页
    1.3 朊蛋白疾病的治疗和预防第17-18页
    1.4 目的与意义第18-19页
第二章 重组牛朊蛋白的制备第19-31页
    前言第19-20页
    2.1 材料第20-22页
        2.1.1 载体与菌株第20页
        2.1.2 主要试验仪器与设备第20页
        2.1.3 主要试剂第20页
        2.1.4 试验所用溶液及配制第20-22页
            2.1.4.1 重组菌诱导表达所用培养基的配制第20-21页
            2.1.4.2 SDS-PAGE和WestenBlot所用试剂的配制第21页
            2.1.4.3 重组蛋白纯化所用溶液的配制第21-22页
    2.2 方法第22-26页
        2.2.1 重组蛋白的诱导表达及SDS-PAGE结果鉴定第22-23页
            2.2.1.1 重组菌的活化第22页
            2.2.1.2 重组菌的诱导表达第22-23页
            2.2.1.3 重组菌的大量诱导表达第23页
        2.2.2 重组蛋白的提取、纯化和复性第23-24页
            2.2.2.1 重组蛋白的提取第23页
            2.2.2.2 重组蛋白的纯化第23-24页
            2.2.2.3 重组蛋白纯化物的复性第24页
            2.2.2.4 纯化后重组蛋白SDS-PAGE鉴定结果第24页
        2.2.3 重组蛋白Western Blot鉴定结果第24-25页
        2.2.4 对照抗原的制备第25-26页
    2.3 结果与分析第26-29页
        2.3.1 表达菌液的测序鉴定第26页
        2.3.2 重组蛋白的诱导表达结果第26-27页
        2.3.3 重组朊蛋白纯化物SDS-PAGE的鉴定结果第27-28页
        2.3.4 重组朊蛋白纯化物Western blot鉴定第28-29页
    2.4 讨论第29-30页
    2.5 结论第30-31页
第三章 牛朊蛋白单克隆抗体的初步制备第31-49页
    前言第31-32页
    3.1 材料第32-33页
        3.1.1 试验动物与细胞第32页
        3.1.2 主要试验仪器及设备第32页
        3.1.3 主要试剂第32页
        3.1.4 试验所用溶液及配制第32-33页
    3.2 方法第33-38页
        3.2.1 动物免疫第33页
        3.2.2 间接ELISA检测方法的建立第33-34页
            3.2.2.1 阳性与阴性血清的制备第33页
            3.2.2.2 抗原最佳包被浓度与血清最佳稀释度的确定第33页
            3.2.2.3 封闭液与血清与一抗、二抗作用时间的选择第33-34页
            3.2.2.4 间接ELISA检测被免疫小鼠的血清第34页
        3.2.3 Western blot检测方法的建立第34页
            3.2.3.1 脑匀浆制备第34页
            3.2.3.2 BAC蛋白法检测脑组织、SP2/0细胞的蛋白浓度第34页
        3.2.4 骨髓瘤细胞的复苏与培养第34页
        3.2.5 饲养层细胞的制备第34-35页
        3.2.6 脾淋巴细胞的准备第35页
        3.2.7 细胞的融合第35页
        3.2.8 杂交瘤细胞的培养和筛选第35-36页
        3.2.9 杂交瘤细胞的冻存第36页
        3.2.10 杂交瘤细胞的复苏第36页
        3.2.11 Western blot检测杂交瘤细胞的特性第36页
        3.2.12 抗体Ig类及亚类的鉴定第36-37页
        3.2.13 数据统计第37-38页
    3.3 结果与分析第38-46页
        3.3.1 最佳抗原及抗体工作浓度的确定第38-39页
        3.3.2 封闭液的选择第39页
        3.3.3 抗原与待检血清和二抗的最佳作用时间第39-40页
        3.3.4 BCA法对脑组织的蛋白浓度测定第40-41页
        3.3.5 抗血清鉴定第41-43页
        3.3.6 杂交瘤细胞系的建立及部分特性鉴定结果第43-44页
            3.3.6.1 骨髓瘤细胞(SP2/0)特异性检测第43-44页
            3.3.6.2 杂交瘤细胞株的建立和分泌抗体稳定性第44页
        3.3.7 单抗生物学特性鉴定第44页
        3.3.8 Wester Blot检测杂交瘤细胞株特异性第44-46页
    3.4 讨论第46-47页
    3.5 结论第47-48页
    3.6 后续的研究工作第48-49页
参考文献第49-55页
Abstract第55-56页
附录第57页

论文共57页,点击 下载论文
上一篇:猪伪狂犬病毒Fa株感染性细菌人工染色体克隆的构建及其体外生长特性研究
下一篇:不同来源肠球菌新型Tn916型接合转座子的鉴定和功能分析