| 摘要 | 第5-9页 |
| Abstract | 第9-13页 |
| 第一章 绪论 | 第22-41页 |
| 1.1 引言 | 第22-23页 |
| 1.1.1 研究背景 | 第22页 |
| 1.1.2 研究目的及意义 | 第22-23页 |
| 1.1.3 项目经费来源 | 第23页 |
| 1.2 国内外研究现状及评述 | 第23-37页 |
| 1.2.1 濒危植物保护生物学研究概述 | 第23-31页 |
| 1.2.2 杜鹃属植物研究概况 | 第31-37页 |
| 1.3 研究目标和主要研究内容 | 第37-40页 |
| 1.3.1 关键科学问题与研究目标 | 第37-38页 |
| 1.3.2 主要研究内容 | 第38-40页 |
| 1.4 技术路线图 | 第40-41页 |
| 第二章 长梗杜鹃的生物学特征及野生资源状况 | 第41-50页 |
| 2.1 调查方法 | 第42-43页 |
| 2.1.1 文献调查 | 第42页 |
| 2.1.2 实地调查 | 第42页 |
| 2.1.3 Max Ent生态位模型预测适生区 | 第42-43页 |
| 2.2 长梗杜鹃形态特征 | 第43-44页 |
| 2.3 资源分布现状调查 | 第44-47页 |
| 2.4 生境描述和繁殖方式 | 第47-48页 |
| 2.5 生活史 | 第48页 |
| 2.6 小结与讨论 | 第48-50页 |
| 第三章 长梗杜鹃的花粉形态及其特性研究 | 第50-62页 |
| 3.1 材料与方法 | 第51-52页 |
| 3.1.1 供试材料 | 第51页 |
| 3.1.2 长梗杜鹃花粉形态观察 | 第51页 |
| 3.1.3 长梗杜鹃开花过程中花粉活力检测 | 第51-52页 |
| 3.1.4 长梗杜鹃花粉萌发试验 | 第52页 |
| 3.1.5 长梗杜鹃花粉贮藏力测定 | 第52页 |
| 3.2 结果与分析 | 第52-58页 |
| 3.2.1 长梗杜鹃花粉形态特征 | 第52-55页 |
| 3.2.2 长梗杜鹃开花过程中的花粉活力 | 第55-56页 |
| 3.2.3 蔗糖、H_3BO_3和CaCl_2三因子对长梗杜鹃花粉萌发的影响 | 第56-57页 |
| 3.2.4 不同贮藏温度对长梗杜鹃花粉萌发力的影响 | 第57-58页 |
| 3.3 讨论 | 第58-62页 |
| 第四章 长梗杜鹃的繁殖生物学初步研究 | 第62-81页 |
| 4.1 材料与方法 | 第63-66页 |
| 4.1.1 研究物种和研究地概况 | 第63页 |
| 4.1.2 研究方法 | 第63-66页 |
| 4.2 数据分析 | 第66-67页 |
| 4.3 结果与分析 | 第67-75页 |
| 4.3.1 长梗杜鹃的开花物候和花部特征 | 第67-68页 |
| 4.3.2 长梗杜鹃的花粉活力和柱头可授性 | 第68-69页 |
| 4.3.3 长梗杜鹃的花瓣颜色反射 | 第69-70页 |
| 4.3.4 长梗杜鹃的杂交指数和花粉-胚珠比（P/O） | 第70页 |
| 4.3.5 长梗杜鹃的套袋、去雄及人工授粉试验 | 第70-71页 |
| 4.3.6 访花昆虫的种类及访花行为 | 第71-74页 |
| 4.3.7 有效传粉者的访花频率 | 第74-75页 |
| 4.4 讨论 | 第75-81页 |
| 4.4.1 花部特征、花粉活力和柱头可授性 | 第75-76页 |
| 4.4.2 花瓣颜色反射 | 第76-77页 |
| 4.4.3 繁育系统 | 第77-79页 |
| 4.4.4 特化的传粉者 | 第79页 |
| 4.4.5 传粉效率 | 第79-81页 |
| 第五章 长梗杜鹃的转录组分析 | 第81-97页 |
| 5.1 材料与方法 | 第81-83页 |
| 5.1.1 试验材料 | 第81-82页 |
| 5.1.2 长梗杜鹃叶片总RNA提取 | 第82页 |
| 5.1.3 转录组测序 | 第82页 |
| 5.1.4 数据过滤和de novo组装 | 第82页 |
| 5.1.5 Unigene注释、CDS、TF编码能力预测以及SNP检测 | 第82-83页 |
| 5.2 结果与分析 | 第83-94页 |
| 5.2.1 长梗杜鹃转录组测序数据过滤 | 第83-84页 |
| 5.2.2 长梗杜鹃转录组de novo组装 | 第84-86页 |
| 5.2.3 长梗杜鹃转录组Unigene的NR功能注释 | 第86页 |
| 5.2.4 长梗杜鹃转录组Unigene的COG注释及其分类 | 第86-88页 |
| 5.2.5 长梗杜鹃转录组Unigene的GO注释及其分类 | 第88-89页 |
| 5.2.6 长梗杜鹃转录组Unigene的KEGG代谢通路分析 | 第89-91页 |
| 5.2.7 长梗杜鹃转录组Unigene的功能注释韦恩图及其CDS预测 | 第91-92页 |
| 5.2.8 长梗杜鹃转录组Unigene的TF编码能力及SNP检测 | 第92-94页 |
| 5.3 讨论 | 第94-97页 |
| 第六章 长梗杜鹃EST-SSR特征分析及引物开发 | 第97-117页 |
| 6.1 材料与方法 | 第98-102页 |
| 6.1.1 供试材料 | 第98页 |
| 6.1.2 基因组DNA提取 | 第98-99页 |
| 6.1.3 SSR位点的搜索与分析 | 第99页 |
| 6.1.4 SSR引物设计与筛选 | 第99页 |
| 6.1.5 SSR引物多态性检测 | 第99-102页 |
| 6.1.6 多态性SSR引物的跨物种应用 | 第102页 |
| 6.2 数据分析 | 第102-103页 |
| 6.3 结果与分析 | 第103-113页 |
| 6.3.1 长梗杜鹃转录组中SSR位点的分布丰度与距离 | 第103-104页 |
| 6.3.2 长梗杜鹃转录组中SSR位点的重复单元类型 | 第104页 |
| 6.3.3 长梗杜鹃转录组中SSR重复基元碱基组成 | 第104-105页 |
| 6.3.4 长梗杜鹃转录组中SSR在编码区中的分布特征 | 第105-106页 |
| 6.3.5 长梗杜鹃转录组中SSR基元重复次数 | 第106-107页 |
| 6.3.6 长梗杜鹃转录组中SSR序列长度分布及变异情况 | 第107-110页 |
| 6.3.7 长梗杜鹃引物开发结果 | 第110页 |
| 6.3.8 遗传多样性分析 | 第110页 |
| 6.3.9 跨物种扩增检测 | 第110-113页 |
| 6.4 讨论 | 第113-117页 |
| 第七章 基于EST-SSR分子标记的保护遗传学研究 | 第117-135页 |
| 7.1 材料与方法 | 第118-121页 |
| 7.1.1 实验材料 | 第118页 |
| 7.1.2 主要溶液配制 | 第118-119页 |
| 7.1.3 实验方法 | 第119-121页 |
| 7.2 数据分析 | 第121-123页 |
| 7.2.1 群体遗传多样性分析 | 第122页 |
| 7.2.2 群体遗传结构分析 | 第122-123页 |
| 7.3 结果与分析 | 第123-131页 |
| 7.3.1 遗传多样性 | 第123-125页 |
| 7.3.2 遗传结构 | 第125-127页 |
| 7.3.3 聚类分析 | 第127-130页 |
| 7.3.4 遗传距离和地理距离的相关性 | 第130页 |
| 7.3.5 瓶颈效应分析 | 第130-131页 |
| 7.4 讨论 | 第131-135页 |
| 7.4.1 遗传多样性 | 第131-132页 |
| 7.4.2 遗传结构 | 第132-135页 |
| 第八章 主要结论、创新点及展望 | 第135-141页 |
| 8.1 主要结论 | 第135-137页 |
| 8.2 创新点 | 第137-138页 |
| 8.3 后续研究及展望 | 第138-141页 |
| 参考文献 | 第141-162页 |
| 在读期间的学术研究 | 第162-163页 |
| 致谢 | 第163-165页 |
