| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略词表 | 第8-9页 |
| 目录 | 第9-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-24页 |
| 1.1 逆转录病毒载体在基因转导中的重要性 | 第12-14页 |
| 1.1.1 基因治疗及其发展 | 第12页 |
| 1.1.2 基因治疗中的载体系统 | 第12-13页 |
| 1.1.3 逆转录病毒载体在基因治疗中的重要地位 | 第13-14页 |
| 1.2 阳离子化合物在增强基因转导中的应用 | 第14-15页 |
| 1.3 多肽多聚物促进病毒感染和基因转导 | 第15-20页 |
| 1.3.1 纤维连接蛋白 | 第15页 |
| 1.3.2 Vectorfusin-1 | 第15-16页 |
| 1.3.3 PAP 片段 | 第16-20页 |
| 1.4 淀粉样纤维多肽介导病毒感染增强的机制 | 第20页 |
| 1.5 减毒流感疫苗优势 | 第20-22页 |
| 1.5.1 抗病毒药物 | 第20-21页 |
| 1.5.2 灭活流感疫苗 | 第21页 |
| 1.5.3 减毒流感疫苗 | 第21-22页 |
| 1.6 立题依据和实验设计 | 第22-24页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第24-39页 |
| 2.1 实验材料 | 第24-29页 |
| 2.1.1 多肽合成 | 第24页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第24-26页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第26-27页 |
| 2.1.4 质粒、细胞和病毒 | 第27页 |
| 2.1.5 实验动物 | 第27-28页 |
| 2.1.6 试剂配制 | 第28-29页 |
| 2.2 实验方法 | 第29-39页 |
| 2.2.1 多肽配制 | 第29页 |
| 2.2.2 多肽的质量表征 | 第29-30页 |
| 2.2.3 病毒包装及定量 | 第30-32页 |
| 2.2.4 淀粉样纤维形态观察及特征性反应 | 第32-33页 |
| 2.2.5 P16-D 促进 HIV-1 病毒感染实验 | 第33-36页 |
| 2.2.6 动物免疫 | 第36-37页 |
| 2.2.7 小鼠血清制备 | 第37页 |
| 2.2.8 ELISA 检测 | 第37页 |
| 2.2.9 抗体分型检测 | 第37-39页 |
| 第三章 实验结果与讨论 | 第39-53页 |
| 3.1 P16 衍生肽的合成及质量检测 | 第39-40页 |
| 3.2 P16 衍生肽的基础研究 | 第40-41页 |
| 3.2.1 P16 衍生肽的促感染活性 | 第40-41页 |
| 3.2.2 P16 衍生肽的细胞毒性研究 | 第41页 |
| 3.3 P16-D 通过形成淀粉样纤维促进 HIV-1 病毒的感染 | 第41-45页 |
| 3.3.1 P16-D 形成淀粉样纤维的确证 | 第42-43页 |
| 3.3.2 EGCG 对 P16-D 淀粉样纤维形态和活性的影响 | 第43-45页 |
| 3.4 Heparin 封闭 P16-D 的促感染活性 | 第45页 |
| 3.5 P16-D 与病毒和靶细胞的作用 | 第45-47页 |
| 3.5.1 P16-D 能有效地结合靶细胞来促进病毒感染 | 第45-46页 |
| 3.5.2 P16-D 有效地捕获病毒颗粒 | 第46-47页 |
| 3.6 P16-D 与常用促感染试剂的比较 | 第47-48页 |
| 3.7 P16-D 促进 HIV-1 外其他包膜病毒的感染 | 第48-50页 |
| 3.8 P16-D 淀粉样纤维在减毒的活的流感病毒免疫中的应用 | 第50-53页 |
| 3.8.1 免疫后小鼠血清中特异性的 IgG 抗体滴度检测 | 第50-51页 |
| 3.8.2 特异性的抗体分型检测 | 第51-53页 |
| 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-66页 |
| 作者简介 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
