| 英文缩略词 | 第4-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 1 前言 | 第13-22页 |
| 1.1 日本沼虾及其养殖近况 | 第13-14页 |
| 1.1.1 日本沼虾的生物学特征 | 第13页 |
| 1.1.2 主要养殖模式现状 | 第13-14页 |
| 1.2 水产动物的同类相残行为 | 第14-15页 |
| 1.2.1 同类相残行为的机理研究进展 | 第14页 |
| 1.2.2 甲壳类动物的同类相残行为研究进展 | 第14-15页 |
| 1.3 日本沼虾的鳃组织 | 第15-17页 |
| 1.3.1 光学显微镜观察结构 | 第15-16页 |
| 1.3.2 透射式电子显微镜观察的亚显微结构 | 第16-17页 |
| 1.4 日本沼虾的肝胰腺组织 | 第17-19页 |
| 1.4.1 光学显微镜结构 | 第17-18页 |
| 1.4.2 透射式电子显微镜观察的亚显微结构 | 第18-19页 |
| 1.5 生物胺的简介及其生理学功能 | 第19-20页 |
| 1.5.1 生物胺的简介 | 第19页 |
| 1.5.2 生物胺的生理功能 | 第19-20页 |
| 1.6 本研究的目的及意义 | 第20-22页 |
| 2 材料与方法 | 第22-31页 |
| 2.1 试验材料 | 第22-24页 |
| 2.1.1 试验动物 | 第22页 |
| 2.1.2 主要仪器设备 | 第22-23页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第23页 |
| 2.1.4 常用溶液配制 | 第23-24页 |
| 2.1.5 主要数据库及生物软件 | 第24页 |
| 2.2 试验方法 | 第24-31页 |
| 2.2.1 日本沼虾蜕皮生长期同类相残行为探究 | 第24-26页 |
| 2.2.1.1 无隔板、光照试验 | 第25页 |
| 2.2.1.2 有隔板、光照与气味比较综合试验 | 第25-26页 |
| 2.2.1.3 数据分析 | 第26页 |
| 2.2.2 日本沼虾蜕皮期养殖水体中生物胺种类及含量测定 | 第26-27页 |
| 2.2.2.1 生物胺种类及含量测定 | 第26-27页 |
| 2.2.2.2 数据分析 | 第27页 |
| 2.2.3 尸胺胁迫下日本沼虾的行为和LC_(50)测定 | 第27-28页 |
| 2.2.3.1 确定尸胺浓度梯度的预试验 | 第27-28页 |
| 2.2.3.2 正式试验 | 第28页 |
| 2.2.3.3 数据分析 | 第28页 |
| 2.2.4 尸胺胁迫下日本沼虾鳃组织的病理变化检测 | 第28-30页 |
| 2.2.4.1 鳃组织病理变化的组织切片光学显微镜观察 | 第28-30页 |
| 2.2.4.2 鳃组织病理变化的透射式电镜观察 | 第30页 |
| 2.2.5 尸胺胁迫下日本沼虾肝胰腺组织的病理变化检测 | 第30-31页 |
| 2.2.5.1 肝胰腺组织病理变化的组织切片光学显微镜观察 | 第30页 |
| 2.2.5.2 肝胰腺组织病理变化的透射式电子显微镜观察 | 第30-31页 |
| 3 结果与分析 | 第31-53页 |
| 3.1 日本沼虾蜕皮期同类相残行为及关键影响因素观测结果分析 | 第31-37页 |
| 3.1.1 无隔板光照试验 | 第31-33页 |
| 3.1.2 有隔板、光照与气味比较综合试验 | 第33-37页 |
| 3.2 HPLC对日本沼虾蜕皮期养殖水体中生物胺的测定结果分析 | 第37-43页 |
| 3.3 尸胺对日本沼虾的LC_(50)及SC测定分析 | 第43-45页 |
| 3.4 尸胺对日本沼虾的行为影响观测结果 | 第45-46页 |
| 3.5 尸胺胁迫下日本沼虾鳃组织的组织切片及电子显微镜观察分析 | 第46-49页 |
| 3.5.1 组织切片光学显微镜观察结果 | 第46-48页 |
| 3.5.2 透射式电子显微镜观察分析结果 | 第48-49页 |
| 3.6 尸胺胁迫下日本沼虾肝胰腺组织的组织切片及电子显微镜观察分析 | 第49-53页 |
| 3.6.1 组织切片的光学显微镜观察结果 | 第49-51页 |
| 3.6.2 透射式电子显微镜观察分析结果 | 第51-53页 |
| 4 讨论 | 第53-57页 |
| 4.1 日本沼虾生长蜕皮期同类相残行为及预防措施 | 第53-54页 |
| 4.2 生物胺的急性毒性影响 | 第54-55页 |
| 4.3 生物胺的亚急性毒性影响 | 第55-57页 |
| 5 结论 | 第57-59页 |
| 6 参考文献 | 第59-64页 |
| 7 致谢 | 第64-65页 |
| 8 攻读学位期间发表论文情况 | 第65页 |
