| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 1 引言 | 第10-16页 |
| 1.1 内蒙古绒山羊的发展现状 | 第10-11页 |
| 1.2 单条染色体的微分割 | 第11-12页 |
| 1.3 淋巴细胞周期 | 第12-13页 |
| 1.3.1 淋巴细胞周期G2/M期 | 第12页 |
| 1.3.2 淋巴细胞G2/M期探索的意义 | 第12-13页 |
| 1.4 染色体显微切割的概述 | 第13-15页 |
| 1.4.1 染色体显微切割技术的建立 | 第13页 |
| 1.4.2 染色体微分割的原理和方法 | 第13-15页 |
| 1.4.3 染色体显微切割技术的研究现状 | 第15页 |
| 1.4.4 染色体显微切割技术的应用前景 | 第15页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第15-16页 |
| 2 研究一：淋巴细胞的分离和培养以及淋巴细胞G2期的条件探索 | 第16-18页 |
| 2.1 淋巴细胞的分离和培养 | 第16-17页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第16-17页 |
| 2.1.1.1 实验动物 | 第16页 |
| 2.1.1.2 实验用具和试剂及其配置 | 第16页 |
| 2.1.1.3 实验仪器 | 第16-17页 |
| 2.1.2 实验方法与步骤 | 第17页 |
| 2.1.2.1 绒山羊静脉血液的采集 | 第17页 |
| 2.1.2.2 淋巴细胞分离液分离淋巴细胞的过程 | 第17页 |
| 2.2 淋巴细胞G2期的条件探索 | 第17-18页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第17-18页 |
| 2.2.1.1 实验的材料试剂 | 第17页 |
| 2.2.1.2 实验的仪器设备 | 第17-18页 |
| 2.2.2 实验步骤 | 第18页 |
| 2.2.2.1 实验材料 | 第18页 |
| 2.2.2.2 细胞的中期化处理 | 第18页 |
| 2.2.2.3 流式细胞仪分析 | 第18页 |
| 3 研究二：膜载玻片制备染色体核型和绒山羊Y染色体的显微切割 | 第18-19页 |
| 3.1 膜载玻片制备染色体核型 | 第18-19页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第18-19页 |
| 3.1.1.1 实验耗材与试剂 | 第18页 |
| 3.1.1.2 实验的仪器设备 | 第18-19页 |
| 3.1.1.3 膜载玻片制备染色体核型步骤 | 第19页 |
| 3.2 绒山羊Y染色体的显微切割 | 第19页 |
| 3.2.1 染色体膜载玻片的处理 | 第19页 |
| 3.2.2 染色体显微切割系统软件的调试 | 第19页 |
| 4 结果 | 第19-27页 |
| 4.1 淋巴细胞的分离和培养 | 第19-20页 |
| 4.2 淋巴细胞G2/M摸索结果 | 第20-24页 |
| 4.2.1 正常细胞G2/M期比例 | 第20-21页 |
| 4.2.2 不同作用浓度的PHA和ConA作用下G2/M期所占比例 | 第21-22页 |
| 4.2.3 不同的培养时间加秋水仙素处理下G2/M期所占比例 | 第22-23页 |
| 4.2.4 在44 h附近时间加秋水仙素处理淋巴细胞后检测G2/M期所占的比例 | 第23页 |
| 4.2.5 不同的秋水仙素作用时间下G2/M期所占比例 | 第23-24页 |
| 4.3 膜玻片制备染色体核型结果 | 第24-25页 |
| 4.4 Y染色体显微切割结果 | 第25-26页 |
| 4.5 激光显微切割单条染色体 | 第26-27页 |
| 5 讨论 | 第27-30页 |
| 5.1 淋巴细胞的分离和培养 | 第27-28页 |
| 5.2 淋巴细胞有丝分裂中期化的条件摸索 | 第28-29页 |
| 5.2.1 不同的刺激剂对淋巴细胞周期中期化的作用研究 | 第28页 |
| 5.2.2 刺激剂的作用浓度对淋巴细胞周期中期化的作用研究 | 第28页 |
| 5.2.3 不同的培养时间下加秋水仙素处理对细胞周期中期化的作用研究 | 第28-29页 |
| 5.2.4 分析秋水仙素的作用时间对淋巴细胞G2/M期的比例的影响 | 第29页 |
| 5.3 染色体核型制备的因素 | 第29-30页 |
| 5.4 影响染色体显微切割主要因素 | 第30页 |
| 6 结论与展望 | 第30-32页 |
| 6.1 结论 | 第30-31页 |
| 6.2 展望 | 第31-32页 |
| 致谢 | 第32-33页 |
| 参考文献 | 第33-36页 |
| 作者简介 | 第36页 |
