| 致谢 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 缩略语 | 第9-12页 |
| 1 引言 | 第12-14页 |
| 2 材料和方法 | 第14-26页 |
| 2.1 仪器和设备 | 第14-15页 |
| 2.2 试剂 | 第15-17页 |
| 2.3 主要试剂配制方法 | 第17-20页 |
| 2.4 原代大鼠海马神经元培养 | 第20-21页 |
| 2.5 酒精和药物处理 | 第21页 |
| 2.6 转染 | 第21-22页 |
| 2.7 全细胞膜片钳记录 | 第22-23页 |
| 2.8 生物素测定细胞表面蛋白 | 第23页 |
| 2.9 Western Blot | 第23-24页 |
| 2.10 共聚焦荧光显微镜成像 | 第24-25页 |
| 2.11 数据统计和分析 | 第25-26页 |
| 3 实验结果 | 第26-36页 |
| 3.1 蛋白磷酸化参与单次剂量酒精撤退对突触外GABA_A受体介导的电流的快速调节 | 第26-28页 |
| 3.2 抑制PKC阻断单次剂量酒精撤退诱导的I_(tonic)幅度的减小和急性酒精耐受 | 第28-30页 |
| 3.3 抑制PKC阻断单次剂量酒精撤退诱导的突触外GABA_A受体δ亚基膜表面表达的降低以及重组GABA_A受体δ亚基荧光强度的下降 | 第30-31页 |
| 3.4 单次剂量酒精撤退能够选择性增加海马神经元PKCδ的表达 | 第31-32页 |
| 3.5 选择性抑制PKCδ亚型阻断单次剂量酒精撤退引起GABA_A受体δ亚基膜表面表达的降低 | 第32-34页 |
| 3.6 选择性抑制PKCδ亚型挽救酒精撤退引起的I_(tonic)急性酒精耐受以及重组GABA_A受体δ亚基荧光强度的下降 | 第34-36页 |
| 4 讨论 | 第36-42页 |
| 参考文献 | 第42-50页 |
| 文献综述 | 第50-68页 |
| 参考文献 | 第58-68页 |
| 作者简介 | 第68页 |
