摘要 | 第3-4页 |
ABSTRACT | 第4页 |
第一章 文献综述 | 第8-20页 |
1.1 维生素C 二步发酵法 | 第8-11页 |
1.1.1 维生素C 二步发酵过程概述 | 第8-9页 |
1.1.2 维生素C 二步发酵法中混菌关系的研究现状 | 第9-11页 |
1.2 生态体系的不同接种状态研究现状 | 第11-13页 |
1.2.1 生态体系的不同接种密度研究现状 | 第11-12页 |
1.2.2 生态体系的不同接种比例研究现状 | 第12-13页 |
1.3 代谢组学概述 | 第13-19页 |
1.3.1 代谢组学的提出和发展 | 第14页 |
1.3.2 代谢组学研究方法 | 第14-16页 |
1.3.3 代谢组学的应用 | 第16-19页 |
1.4 本课题的研究意义和主要研究内容 | 第19-20页 |
1.4.1 研究意义 | 第19页 |
1.4.2 研究内容 | 第19-20页 |
第二章 单菌发酵中小分子代谢物的测定和分析 | 第20-28页 |
2.1 实验材料 | 第20-22页 |
2.1.1 实验菌种 | 第20页 |
2.1.2 实验试剂 | 第20-21页 |
2.1.3 实验仪器 | 第21页 |
2.1.4 培养基及培养条件 | 第21-22页 |
2.2 研究方法 | 第22-25页 |
2.2.1 实验设计 | 第22-23页 |
2.2.2 代谢物样品的制备和衍生化 | 第23-24页 |
2.2.3 GCT Premier 分析条件的建立 | 第24页 |
2.2.4 数据处理与分析 | 第24-25页 |
2.3 结果与讨论 | 第25-27页 |
2.3.1 单菌发酵胞内代谢物谱图 | 第25页 |
2.3.2 单菌胞内代谢物鉴定结果 | 第25-27页 |
2.4 小结 | 第27-28页 |
第三章 荧光定量PCR 法测定混菌体系生长动力学参数 | 第28-39页 |
3.1 实验材料 | 第28-29页 |
3.1.1 实验菌种 | 第28页 |
3.1.2 实验试剂 | 第28页 |
3.1.3 实验仪器 | 第28-29页 |
3.1.4 培养基及培养条件 | 第29页 |
3.2 研究方法 | 第29-35页 |
3.2.1 实验设计 | 第29-35页 |
3.3 结果与讨论 | 第35-38页 |
3.3.1 巨大芽孢杆菌生长曲线测定结果 | 第35-36页 |
3.3.2 酮古龙酸杆菌生长曲线测定结果 | 第36-37页 |
3.3.3 不同接种状态情况下混菌生长相图 | 第37-38页 |
3.4 小结 | 第38-39页 |
第四章 混菌不同接种状态的代谢组学研究 | 第39-62页 |
4.1 实验材料 | 第39页 |
4.2 研究方法 | 第39-40页 |
4.2.1 实验设计 | 第39-40页 |
4.2.2 代谢物样品的制备和衍生化 | 第40页 |
4.2.3 GCT Premier 分析条件的建立 | 第40页 |
4.2.4 数据处理 | 第40页 |
4.3 结果与讨论 | 第40-61页 |
4.3.1 混菌细胞的代谢物谱图 | 第40-42页 |
4.3.2 代谢物鉴定结果 | 第42-44页 |
4.3.3 细胞代谢物样品的PCA 分析 | 第44-46页 |
4.3.4 生物标志物含量变化比较及功能分析 | 第46-61页 |
4.4 小结 | 第61-62页 |
第五章 结论与展望 | 第62-64页 |
5.1 结论 | 第62-63页 |
5.2 展望 | 第63-64页 |
参考文献 | 第64-68页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第68-69页 |
致谢 | 第69页 |