| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第11-21页 |
| 1.1 多环芳烃简介 | 第11-12页 |
| 1.2 多环芳烃的微生物修复 | 第12-13页 |
| 1.3 生物表面活性剂及其在有机物污染生物降解中的应用 | 第13-18页 |
| 1.3.1 生物表面活性剂简介 | 第14-15页 |
| 1.3.2 生物表面活性剂对降解有机物的作用 | 第15-16页 |
| 1.3.3 生物表面活性剂在有机物生物降解中的应用 | 第16-18页 |
| 1.4 本课题的研究意义 | 第18-19页 |
| 1.5 本论文的研究工作 | 第19-21页 |
| 1.5.1 研究内容 | 第19页 |
| 1.5.2 研究技术路线 | 第19-21页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第21-30页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-24页 |
| 2.1.1 实验用菌种 | 第21页 |
| 2.1.2 主要试剂和仪器 | 第21-22页 |
| 2.1.3 培养基及溶液的配置 | 第22-24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-30页 |
| 2.2.1 皂素和鼠李糖脂溶液的临界胶束浓度测定 | 第24页 |
| 2.2.2 菌株复壮及纯种分离 | 第24-25页 |
| 2.2.3 培养条件 | 第25页 |
| 2.2.4 菲的分析测定方法及其去除率的计算 | 第25-26页 |
| 2.2.5 生物表面活性剂作用下菌株GY2B和F14生长曲线 | 第26页 |
| 2.2.6 菌GY2B对鼠李糖脂的利用 | 第26页 |
| 2.2.7 菌GY2B和菌F14的表面形貌观察（扫描电镜分析） | 第26-27页 |
| 2.2.8 细胞界面疏水性的测试 | 第27页 |
| 2.2.9 Zeta电位和pH测定 | 第27页 |
| 2.2.10 菌GY2B的细胞脂肪酸检测 | 第27-28页 |
| 2.2.11 菌株GY2B和菌F14的傅立叶变换红外光谱分析 | 第28页 |
| 2.2.12 鼠李糖脂作用下菲降解中间产物测定 | 第28-30页 |
| 第三章 生物表面活性剂对菌株降解菲性能和生长情况的影响研究 | 第30-40页 |
| 3.1 引言 | 第30页 |
| 3.2 生物表面活性剂-MSM溶液临界胶束浓度 | 第30-32页 |
| 3.2.1 皂素-MSM溶液临界胶束浓度 | 第30-31页 |
| 3.2.2 鼠李糖脂的临界胶束浓度 | 第31-32页 |
| 3.3 菌株复壮与纯种分离 | 第32-33页 |
| 3.4 生物表面活性剂对菌株GY2B和F14降解菲的影响 | 第33-36页 |
| 3.4.1 皂素对菌株GY2B和F14降解菲的影响 | 第33-34页 |
| 3.4.2 鼠李糖脂对菌株GY2B和F14降解菲的影响 | 第34-36页 |
| 3.5 生物表面活性剂对菌GY2B和F14的生长影响 | 第36-39页 |
| 3.5.1 皂素对菌GY2B和F14的生长影响 | 第36-37页 |
| 3.5.2 鼠李糖脂对菌株GY2B和F14生长曲线的影响 | 第37页 |
| 3.5.3 菌GY2B对鼠李糖脂的利用 | 第37-39页 |
| 3.6 本章小结 | 第39-40页 |
| 第四章 生物表面活性剂对菌株细胞特性的影响研究 | 第40-58页 |
| 4.1 引言 | 第40页 |
| 4.2 生物表面活性剂作用下菌株的微观形貌观察 | 第40-45页 |
| 4.2.1 皂素作用下菌GY2B和F14的扫描电镜图分析 | 第40-42页 |
| 4.2.2 鼠李糖脂作用下菌GY2B和F14的扫描电镜图分析 | 第42-45页 |
| 4.3 鼠李糖脂作用下菌GY2B和F14细胞界面疏水性的变化 | 第45-46页 |
| 4.4 鼠李糖脂作用下菌GY2B的细胞表面Zeta电位变化 | 第46-48页 |
| 4.5 鼠李糖脂作用下菌GY2B细胞脂肪酸含量变化 | 第48-50页 |
| 4.6 鼠李糖脂作用下菌GY2B和F14细胞官能团变化 | 第50-54页 |
| 4.7 鼠李糖脂作用下菌GY2B对菲降解的中间产物含量变化 | 第54-55页 |
| 4.8 鼠李糖脂作用下菌GY2B培养基的Zeta电位和pH变化影响 | 第55-56页 |
| 4.9 本章小结 | 第56-58页 |
| 第五章 结论与展望 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-71页 |
| 攻读博士/硕士学位期间取得的研究成果 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 附件 | 第73页 |
