| 摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第12-21页 |
| 1.1 试验研究的目的与意义 | 第12页 |
| 1.2 国内外番茄抗旱的研究进展 | 第12-20页 |
| 1.2.1 干旱对植物的影响 | 第12-15页 |
| 1.2.2 植物抗旱的适应机制 | 第15-16页 |
| 1.2.3 水杨酸抗旱的研究进展 | 第16-17页 |
| 1.2.4 氯化钙抗旱的研究进展 | 第17-18页 |
| 1.2.5 cDNA-AFLP技术的特点及应用 | 第18-20页 |
| 1.3 技术路线 | 第20-21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-34页 |
| 2.1 试验材料 | 第21-22页 |
| 2.1.1 植物材料的准备 | 第21页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第21页 |
| 2.1.3 试验试剂 | 第21页 |
| 2.1.4 分子试验所需引物 | 第21-22页 |
| 2.2 试验方法 | 第22-34页 |
| 2.2.1 试验材料的处理 | 第22页 |
| 2.2.2 生理指标的测定 | 第22-23页 |
| 2.2.3 生理指标数据处理并筛选最佳浓度及关键时间点 | 第23-24页 |
| 2.2.4 番茄叶片总RNA的提取及鉴定 | 第24页 |
| 2.2.5 cDNA双链的合成 | 第24-26页 |
| 2.2.6 cDNA的酶切与接头连接 | 第26页 |
| 2.2.7 cDNA-AFLP预扩增 | 第26-27页 |
| 2.2.8 cDNA-AFLP选择性扩增 | 第27-29页 |
| 2.2.9 聚丙烯酰氨凝胶电泳 | 第29-30页 |
| 2.2.10 差异条带的回收 | 第30-31页 |
| 2.2.11 差异条带的克隆 | 第31-32页 |
| 2.2.12 差异表达序列的生物信息学分析 | 第32页 |
| 2.2.13 差异表达序列的荧光定量PCR验证 | 第32-34页 |
| 3 结果与分析 | 第34-52页 |
| 3.1 生理指标的测定结果分析 | 第34-41页 |
| 3.1.1 SA和CaCl_2对干旱胁迫下番茄幼苗相对含水量的影响 | 第34-35页 |
| 3.1.2 SA和CaCl_2对干旱胁迫下番茄幼苗相对电导率和MDA含量影响 | 第35-37页 |
| 3.1.3 SA和CaCl_2对干旱胁迫下番茄幼苗叶绿素的影响 | 第37页 |
| 3.1.4 SA和CaCl_2对干旱胁迫下番茄幼苗Pro和可溶性蛋白含量的影响 | 第37-39页 |
| 3.1.5 SA和CaCl_2对干旱胁迫下番茄幼苗保护酶活性的影响 | 第39-41页 |
| 3.2 总RNA的提取 | 第41-42页 |
| 3.3 双链cDNA的合成 | 第42页 |
| 3.4 预扩增结果检测 | 第42页 |
| 3.5 选择性扩增结果 | 第42-43页 |
| 3.6 聚丙烯酰胺凝胶差异片段的选择 | 第43-45页 |
| 3.7 测序结果的比对 | 第45-50页 |
| 3.8 差异表达序列的荧光定量结果 | 第50-52页 |
| 4 讨论 | 第52-55页 |
| 4.1 水分胁迫下水杨酸和氯化钙对番茄幼苗抗旱性的影响 | 第52-53页 |
| 4.2 干旱时间点的确定 | 第53页 |
| 4.3 水分胁迫下水杨酸和氯化钙对番茄幼苗抗旱差异表达基因的cDNA-AFLP分析 | 第53-55页 |
| 4.3.1 cDNA-AFLP的相关问题 | 第53-54页 |
| 4.3.2 差异条带的基因功能分析 | 第54-55页 |
| 5 结论 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-62页 |
| 附录 | 第62-68页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第68页 |
