| 摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 第一章 绪论 | 第16-25页 |
| 1.1 地木耳的分类地位与生长环境 | 第16-18页 |
| 1.1.1 地木耳的分类 | 第16页 |
| 1.1.2 地木耳的形态 | 第16-18页 |
| 1.1.3 地木耳的分布与生长环境 | 第18页 |
| 1.2 地木耳的生理特征 | 第18-19页 |
| 1.3 地木耳的营养组成与作用 | 第19-21页 |
| 1.4 地木耳菌的繁殖及生活史 | 第21页 |
| 1.5 地木耳人工培养技术研究进展 | 第21-22页 |
| 1.6 地木耳的应用研究进展 | 第22-23页 |
| 1.6.1 地木耳对植物生长的促进作用 | 第22页 |
| 1.6.2 地木耳在环境方面的应用 | 第22页 |
| 1.6.3 地木耳在食品方面的应用 | 第22-23页 |
| 1.6.4 地木耳的医疗保健价值 | 第23页 |
| 1.7 地木耳资源开发亟待解决的问题 | 第23-25页 |
| 第二章 地木耳遗传多样性分析 | 第25-54页 |
| 2.1 概述 | 第25-28页 |
| 2.1.1 遗传多样性概述 | 第25页 |
| 2.1.2 遗传多样性的研究内容与方法 | 第25-27页 |
| 2.1.3 地木耳遗传多样性研究 | 第27页 |
| 2.1.4 本研究的目的与意义 | 第27-28页 |
| 2.2 材料与方法 | 第28-37页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第28-31页 |
| 2.2.2 实验试剂及设备 | 第31-32页 |
| 2.2.3 地木耳中DNA提取方法 | 第32-33页 |
| 2.2.4 PCR扩增 | 第33-35页 |
| 2.2.5 琼脂糖凝胶电泳 | 第35页 |
| 2.2.6 数据处理与分析 | 第35-37页 |
| 2.3 结果与分析 | 第37-48页 |
| 2.3.1 DNA提取及质量检测 | 第37-38页 |
| 2.3.2 引物筛选及多态性 | 第38-40页 |
| 2.3.3 地木耳的遗传多样性分析 | 第40-43页 |
| 2.3.4 遗传分化与基因流分析 | 第43-45页 |
| 2.3.5 遗传距离与聚类分析 | 第45-48页 |
| 2.3.6 居群间遗传距离与地理距离的相关性分析 | 第48页 |
| 2.4 讨论 | 第48-52页 |
| 2.4.1 改良CTAB法提取地木耳DNA质量高 | 第48页 |
| 2.4.2 地木耳物种水平上的遗传多样性高于居群水平 | 第48-50页 |
| 2.4.3 地木耳居群间的遗传分化大于居群内 | 第50-51页 |
| 2.4.4 海拔高度对地木耳的遗传分化有显著影响 | 第51-52页 |
| 2.5 本章小结 | 第52-54页 |
| 第三章 ICP-AES法测定地木耳中微量元素含量 | 第54-63页 |
| 3.1 概述 | 第54-55页 |
| 3.1.1 地木耳中的微量元素 | 第54页 |
| 3.1.2 ICP-AES法 | 第54-55页 |
| 3.1.3 本研究的目的与意义 | 第55页 |
| 3.2 材料与方法 | 第55-57页 |
| 3.2.1 实验材料采集 | 第55页 |
| 3.2.2 实验试剂及设备 | 第55页 |
| 3.2.3 样品预处理 | 第55-56页 |
| 3.2.4 湿法消解 | 第56页 |
| 3.2.5 实验仪器及工作参数 | 第56页 |
| 3.2.6 工作曲线与检出限 | 第56-57页 |
| 3.2.7 回收率测定 | 第57页 |
| 3.2.8 评价标准 | 第57页 |
| 3.3 结果与分析 | 第57-58页 |
| 3.3.1 元素的检测波长、检测限和精密度测定 | 第57页 |
| 3.3.2 回收率测定 | 第57-58页 |
| 3.3.3 微量元素含量测定结果 | 第58页 |
| 3.4 讨论 | 第58-61页 |
| 3.5 本章小结 | 第61-63页 |
| 第四章 地木耳活性物质提取及活性研究 | 第63-100页 |
| 4.1 概述 | 第63-67页 |
| 4.1.1 生物体内活性物质及抗氧化机理 | 第63-65页 |
| 4.1.2 抑菌作用研究进展 | 第65-66页 |
| 4.1.3 地木耳营养物质及活性 | 第66-67页 |
| 4.1.4 本研究的目的与意义 | 第67页 |
| 4.2 材料与方法 | 第67-72页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第67页 |
| 4.2.2 实验试剂及设备 | 第67页 |
| 4.2.3 地木耳中多糖、脂类物质、黄酮的提取 | 第67-70页 |
| 4.2.4 不同地区地木耳多糖、脂类物质、黄酮的抗氧化活性测定 | 第70-71页 |
| 4.2.5 不同地区地木耳多糖、脂类物质、黄酮的抑菌活性测定 | 第71-72页 |
| 4.3 结果与分析 | 第72-94页 |
| 4.3.1 地木耳中多糖、脂类物质、黄酮含量与组成分析 | 第72-76页 |
| 4.3.2 地木耳抗氧化活性分析 | 第76-86页 |
| 4.3.3 地木耳多糖、脂类物质和黄酮抑菌作用分析 | 第86-94页 |
| 4.4 讨论 | 第94-98页 |
| 4.4.1 地木耳的物质组成 | 第94-95页 |
| 4.4.2 地木耳多糖、脂类物质和黄酮抗氧化活性 | 第95-97页 |
| 4.4.3 地木耳多糖、脂类物质和黄酮抑菌活性 | 第97-98页 |
| 4.5 本章小结 | 第98-100页 |
| 第五章 红外光谱法鉴别地木耳 | 第100-113页 |
| 5.1 概述 | 第100-102页 |
| 5.1.1 红外光谱法研究概述 | 第100页 |
| 5.1.2 红外光谱技术的应用 | 第100-101页 |
| 5.1.3 红外光谱分析中的数据处理方法 | 第101-102页 |
| 5.1.4 本研究的目的与意义 | 第102页 |
| 5.2 材料与方法 | 第102-103页 |
| 5.2.1 材料来源 | 第102页 |
| 5.2.2 仪器设备及参数设置 | 第102页 |
| 5.2.3 测定方法 | 第102-103页 |
| 5.2.4 数据分析 | 第103页 |
| 5.3 结果与分析 | 第103-110页 |
| 5.3.1 红外光谱图特征峰分析 | 第103-107页 |
| 5.3.2 红外光谱数据的多元统计分析 | 第107-110页 |
| 5.4 讨论 | 第110-111页 |
| 5.5 本章小结 | 第111-113页 |
| 第六章 地木耳人工培养研究 | 第113-135页 |
| 6.1 概述 | 第113-114页 |
| 6.1.1 地木耳生长习性 | 第113页 |
| 6.1.2 地木耳人工培养现状与存在问题 | 第113-114页 |
| 6.1.3 本研究的目的与意义 | 第114页 |
| 6.2 材料与方法 | 第114-118页 |
| 6.2.1 实验材料 | 第114-115页 |
| 6.2.2 实验试剂及设备 | 第115-116页 |
| 6.2.3 菌体的培养 | 第116-117页 |
| 6.2.4 摇床摇动速率、培养温度与光照时间对地木耳生长的影响 | 第117页 |
| 6.2.5 14个菌株在14天的培养期中生物量的测定 | 第117页 |
| 6.2.6 地木耳菌在56天培养期中生物量的测定 | 第117页 |
| 6.2.7 地木耳人工培养中生物量及形态学变化测定 | 第117-118页 |
| 6.3 结果与分析 | 第118-129页 |
| 6.3.1 摇床摇动速率、培养温度与光照时间对地木耳菌生长的影响 | 第118-121页 |
| 6.3.2 14个菌株在14天的培养期中生物量的测定 | 第121页 |
| 6.3.3 3 个菌株在56天培养期中生物量的测定 | 第121-123页 |
| 6.3.4 四川宜宾地木耳人工培养中生物量及形态学变化测定 | 第123-129页 |
| 6.4 讨论 | 第129-133页 |
| 6.4.1 地木耳人工培养条件研究 | 第129-130页 |
| 6.4.2 地木耳培养中菌株筛选、生物量及营养成分变化 | 第130-131页 |
| 6.4.3 地木耳菌在培养过程中形态学变化 | 第131-132页 |
| 6.4.4 菌体破裂对地木耳生物量及形态变化的影响 | 第132-133页 |
| 6.5 本章小结 | 第133-135页 |
| 第七章 结论 | 第135-138页 |
| 7.1 结论 | 第135-136页 |
| 7.2 本文的创新点 | 第136-138页 |
| 致谢 | 第138-139页 |
| 参考文献 | 第139-152页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文 | 第152-153页 |
