| 致谢 | 第6-8页 |
| 摘要 | 第8-9页 |
| Abstract | 第9页 |
| 缩略语表 | 第10-13页 |
| 1 文献综述 | 第13-20页 |
| 1.1 果实色泽形成的机制 | 第13-18页 |
| 1.1.1 花色素苷的作用 | 第13页 |
| 1.1.2 花色素苷的生物合成 | 第13-14页 |
| 1.1.3 花色素苷生物合成的转录调控 | 第14-18页 |
| 1.1.3.1 MYB bHLH WD40转录因子概述 | 第14-15页 |
| 1.1.3.2 MYB bHLH WD40转录因子对花色素苷生物合成的调控 | 第15-18页 |
| 1.2 套袋技术在果树中的应用 | 第18-19页 |
| 1.3 研究的目标与内容 | 第19-20页 |
| 2 水蜜桃花色素苷生物合成调控基因PpWD40-1功能鉴定 | 第20-29页 |
| 2.1 前言 | 第20-21页 |
| 2.2 材料与方法 | 第21-22页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第21页 |
| 2.2.2 果实色差分析 | 第21页 |
| 2.2.3 花色素苷含量的测定 | 第21页 |
| 2.2.4 RNA提取以及cDNA合成 | 第21页 |
| 2.2.5 实时定量PCR | 第21-22页 |
| 2.2.6 烟草瞬时表达 | 第22页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第22-29页 |
| 2.3.1 PpWD40-1序列分析 | 第22-25页 |
| 2.3.2 基于烟草瞬时表达体系PpWD40-1的功能鉴定 | 第25-27页 |
| 2.3.3 PpWD40-1在水蜜桃果实不同部位的表达分析 | 第27-29页 |
| 3 白无纺布套袋增强水蜜桃果实花色素苷生物合成相关基因的表达 | 第29-39页 |
| 3.1 前言 | 第29-30页 |
| 3.2 材料与方法 | 第30-33页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第30-31页 |
| 3.2.2 果实色差分析 | 第31页 |
| 3.2.3 花色素苷含量的测定 | 第31页 |
| 3.2.4 RNA提取以及cDNA合成 | 第31页 |
| 3.2.5 实时定量PCR | 第31页 |
| 3.2.6 试验设置和统计分析 | 第31-33页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第33-39页 |
| 3.3.1 黄纸袋和白无纺布果袋套袋水蜜桃果实色泽和果皮花色素苷含量分析 | 第33-34页 |
| 3.2.2 黄纸袋和白无纺布果袋套袋水蜜桃果皮花色素苷合成结构基因表达分析 | 第34-35页 |
| 3.3.3 黄纸袋和白无纺布果袋套袋水蜜桃果皮花色素苷合成调控基因表达分析 | 第35-39页 |
| 4 结论与展望 | 第39-41页 |
| 4.1 结论 | 第39-40页 |
| 4.1.1 水蜜桃花色素苷生物合成相关调节基因PpWD40-1功能鉴定 | 第39页 |
| 4.1.2 白无纺布果袋较黄纸袋可促进桃果实着色和增强花色素苷合成基因的表达 | 第39-40页 |
| 4.2 展望 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-46页 |
| 作者学习经历及在学期间所取得的科研成果 | 第46页 |
