中文摘要 | 第5-8页 |
Abstract | 第8-9页 |
中英文缩写词对照表 | 第13-16页 |
第1篇 文献综述 | 第16-46页 |
第1章 成骨细胞钙通道研究现状及进展 | 第16-24页 |
1.1.1 OB 的成骨功能 | 第16-22页 |
1.1.2 OB 钙通道研究 | 第22-24页 |
第2章 氟作用下 OB 钙通道研究现状及进展 | 第24-28页 |
1.2.1 氟对 OB 的影响 | 第24-26页 |
1.2.2 氟对 OB 钙通道的影响 | 第26页 |
1.2.3 展望 | 第26-28页 |
第3章 实验设想和意义 | 第28-34页 |
参考文献 | 第34-46页 |
第2篇 氟作用下 MC3T3-E1 细胞及大鼠骨组织 OB 钙稳态变化及机制研究 | 第46-74页 |
第1章 绪论 | 第46-48页 |
第2章 材料和方法 | 第48-61页 |
2.2.1 主要试剂和仪器 | 第48-51页 |
2.2.2 体外细胞培养 | 第51-52页 |
2.2.3 细胞染氟 | 第52页 |
2.2.4 激光共聚焦法测氟作用 48 h 后 MC3T3-E1 细胞[Ca2+]i | 第52-53页 |
2.2.5 Realtime-PCR 检测 MC3T3-E1 细胞 Cav1.2、PMCA、NCS-1、IP3R、SERCA2 mRNA 的表达 | 第53-55页 |
2.2.6 Western Blot 法检测 MC3T3-E1 细胞 Cav1.2、PMCA、NCS-1、IP3R、SERCA2 蛋白的表达 | 第55-57页 |
2.2.7 氟骨症大鼠模型制备 | 第57-58页 |
2.2.8 Realtime-PCR 检测氟骨症大鼠骨组织 Cav1.2、PMCA、NCS-1、IP3R、SERCA2 mRNA 的表达 | 第58-59页 |
2.2.9 Western Blot 法检测氟骨症大鼠骨组织 Cav1.2、PMCA、NCS-1、IP3R、SERCA2 蛋白的表达 | 第59-60页 |
2.2.10 统计学分析 | 第60-61页 |
第3章 实验结果 | 第61-67页 |
2.3.1 氟作用后 48 h MC3T3-E1 细胞[Ca2+]i 测定结果 | 第61页 |
2.3.2 Cav1.2 mRNA、蛋白的表达 | 第61-63页 |
2.3.3 NCS -1 mRNA、蛋白的表达 | 第63-64页 |
2.3.4 PMCA mRNA、蛋白的表达 | 第64页 |
2.3.5 IP3R mRNA、蛋白的表达 | 第64-65页 |
2.3.6 SERCA2b/ ATP2A2 mRNA、蛋白的表达 | 第65-67页 |
第4章 讨论 | 第67-70页 |
第5章 结论 | 第70-71页 |
参考文献 | 第71-74页 |
第3篇 氟通过 L 型钙通道影响 MC3T3-E1 细胞钙稳态及成骨转录因子的表达 | 第74-100页 |
第1章 绪论 | 第74-76页 |
第2章 材料和方法 | 第76-84页 |
3.2.1 主要试剂和仪器 | 第76-80页 |
3.2.2 体外细胞培养 | 第80页 |
3.2.3 细胞染氟及钙拮抗剂 | 第80-81页 |
3.2.4 激光共聚焦法测氟作用 48 h 后 MC3T3-E1 细胞[Ca2+]i | 第81页 |
3.2.5 Realtime-PCR 检测 MC3T3-E1 细胞 Cav1.2、c-fos、c-jun、Runx2、osterix mRNA 的表达 | 第81-82页 |
3.2.6 Western Blot 法检测 MC3T3-E1 细胞 Cav1.2、c-fos、c-jun、Runx2、osterix 蛋白的表达 | 第82-83页 |
3.2.7 统计学分析 | 第83-84页 |
第3章 实验结果 | 第84-90页 |
3.3.1 氟作用 48 h 后 MC3T3-E1 细胞[Ca2+]i 测定结果 | 第84-85页 |
3.3.2 Cav1.2、c-fos、c-jun、Runx2、osterix mRNA 的表达 | 第85-87页 |
3.3.3 Cav1.2、c-fos、c-jun、Runx2、osterix mRNA 的表达 | 第87-90页 |
第4章 讨论 | 第90-93页 |
第5章 结论 | 第93-94页 |
参考文献 | 第94-100页 |
第4篇 课题创新性 | 第100-102页 |
个人简历 | 第102-104页 |
攻读学位期间发表的学术论文及取得的科研成果 | 第104-106页 |
致谢 | 第106页 |