| 缩写符号 | 第10-13页 |
| 中文摘要 | 第13-16页 |
| ABSTRACT | 第16-19页 |
| 第一章 前言 | 第20-46页 |
| 1. 阿拉伯半乳糖蛋白 | 第20-32页 |
| 1.1 AGPs的鉴定标准 | 第20-21页 |
| 1.2 AGPs的结构特征 | 第21-26页 |
| 1.2.1 蛋白骨架 | 第21-23页 |
| 1.2.1.1 经典AGPs | 第21-22页 |
| 1.2.1.2 非经典AGPs | 第22-23页 |
| 1.2.2 GPI锚 | 第23-24页 |
| 1.2.3 糖基侧链 | 第24-25页 |
| 1.2.4 分子模型 | 第25-26页 |
| 1.3 AGPs的生物学功能研究 | 第26-31页 |
| 1.3.1 AGPs在细胞分裂和模式建成中的作用 | 第27页 |
| 1.3.2 AGPs在有性生殖过程中的作用 | 第27-29页 |
| 1.3.3 AGPs在营养生长发育中的作用 | 第29-30页 |
| 1.3.4 AGPs参与植物与环境的相互作用 | 第30-31页 |
| 1.4 木质形成素基因家族的研究现状 | 第31-32页 |
| 2. 植物维管束发育的研究进展 | 第32-41页 |
| 2.1 维管束的结构及功能 | 第32-34页 |
| 2.2 木质部的分化和发育 | 第34-36页 |
| 2.3 韧皮部的分化和发育 | 第36-37页 |
| 2.4 维管束模式建成的时间和空间调控 | 第37-39页 |
| 2.5 维管束参与根向地上部分的信号传递 | 第39-41页 |
| 3. 植物细胞壁发育的研究进展 | 第41-44页 |
| 3.1 细胞壁的成分 | 第41-42页 |
| 3.2 细胞壁的结构 | 第42-43页 |
| 3.3 细胞壁的功能 | 第43-44页 |
| 4. 本研究的目的及意义 | 第44-46页 |
| 第二章 水稻木质形成素基因家族的鉴定和表达分析 | 第46-82页 |
| 1. 材料与方法 | 第46-57页 |
| 1.1 材料的种植与胁迫处理 | 第46-47页 |
| 1.2 水稻基因组的抽提 | 第47页 |
| 1.3 水稻总RNA的抽提及反转录 | 第47-49页 |
| 1.4 通过蛋白序列搜索及保守结构域鉴定OsXYLPs蛋白 | 第49-50页 |
| 1.5 染色体定位和基因复制分析 | 第50页 |
| 1.6 进化关系分析和序列比对 | 第50页 |
| 1.7 高通量表达分析 | 第50-52页 |
| 1.8 PCR反应 | 第52-53页 |
| 1.9 T-DNA突变体的三引物法鉴定 | 第53-54页 |
| 1.10 实时荧光定量PCR | 第54-55页 |
| 1.11 引物 | 第55-56页 |
| 1.12 形态学观察及照相 | 第56-57页 |
| 2. 结果与分析 | 第57-79页 |
| 2.1 OsXYLPs家族成员的鉴定 | 第57-59页 |
| 2.2 OsXYLPs的蛋白质结构分析 | 第59-61页 |
| 2.3 OsXYLPs的进化关系分析及多序列比对 | 第61-63页 |
| 2.4 OsXYLPs基因的染色体定位及基因复制 | 第63-65页 |
| 2.5 OsXYLPs在各个发育时期器官及组织中的表达分析 | 第65-68页 |
| 2.6 OsXYLPs在非生物胁迫及激素处理下的表达分析 | 第68-70页 |
| 2.7 水稻和拟南芥XYLPs基因表达的比较分析 | 第70-72页 |
| 2.8 水稻xylp7突变体的鉴定与表型分析 | 第72-76页 |
| 2.8.1 xylp7突变体的基因组水平鉴定 | 第72-74页 |
| 2.8.2 xylp7突变体的RNA水平鉴定 | 第74-75页 |
| 2.8.3 xylp7突变体的表型观察与分析 | 第75-76页 |
| 2.9 水稻xylp16突变体的鉴定与表型分析 | 第76-79页 |
| 2.9.1 xylp16突变体的基因组水平鉴定 | 第77-78页 |
| 2.9.2 xylp16突变体的RNA水平鉴定 | 第78-79页 |
| 2.9.3 xylp16突变体的表型观察与分析 | 第79页 |
| 3. 讨论 | 第79-82页 |
| 3.1 水稻和拟南芥中类似木质形成素的AGPs | 第79-80页 |
| 3.2 OsXYLPs基因的表达模式 | 第80页 |
| 3.3 基因复制在OsXYLPs家族扩大及功能多样性中发挥着重要的作用 | 第80-81页 |
| 3.4 OsXYLPs基因在激素应答及植物生长发育中的功能 | 第81-82页 |
| 第三章 水稻OsAGP13基因的生物学功能研究 | 第82-128页 |
| 1. 材料与方法 | 第85-97页 |
| 1.1 实验材料 | 第85页 |
| 1.2 水稻基因组的抽提 | 第85页 |
| 1.3 水稻总RNA的抽提及反转录 | 第85-87页 |
| 1.4 所需引物 | 第87-88页 |
| 1.5 PCR反应 | 第88-89页 |
| 1.6 实时荧光定量PCR反应 | 第89-90页 |
| 1.7 石蜡包埋技术 | 第90-91页 |
| 1.8 原位杂交技术 | 第91-93页 |
| 1.8.1 探针构建 | 第91页 |
| 1.8.2 点膜实验 | 第91-92页 |
| 1.8.3 原位杂交反应 | 第92-93页 |
| 1.9 花原基扫描电镜观察 | 第93页 |
| 1.10 冰冻切片及花穗维管束相关参数统计 | 第93-94页 |
| 1.11 树脂包埋与半薄切片 | 第94-95页 |
| 1.12 木质素染色 | 第95页 |
| 1.13 CW染色 | 第95页 |
| 1.14 细胞壁成分含量测定 | 第95-96页 |
| 1.15 AGPs和果胶的免疫反应 | 第96页 |
| 1.16 机械拉伸试验 | 第96页 |
| 1.17 RNA高通量测序 | 第96-97页 |
| 2. 结果与分析 | 第97-125页 |
| 2.1 OsAGP13基因的表达分析 | 第97-100页 |
| 2.2 OsAGP13-RNAi植株的表型分析 | 第100-105页 |
| 2.2.1 野生型与OsAGP13-RNAi植株穗芽结构及分化时期的比较分析 | 第100-102页 |
| 2.2.2 野生型与OsAGP13-RNAi植株花穗结构特征 | 第102-105页 |
| 2.2.2.1 野生型与RNAi植株穗轴结构比较 | 第102-103页 |
| 2.2.2.2 野生型与RNAi植株穗轴中维管束数目比较 | 第103-104页 |
| 2.2.2.3 野生型与RNAi植株花穗维管束结构及厚壁组织比较 | 第104-105页 |
| 2.3 野生型与OsAGP13-RNAi植株机械强度分析 | 第105-106页 |
| 2.4 野生型与OsAGP13-RNAi植株细胞壁物质含量分析 | 第106-108页 |
| 2.5 野生型与OsAGP13-RNAi植株中木质素的含量及分布 | 第108-109页 |
| 2.6 野生型与OsAGP13-RNAi植株中纤维素的含量及分布 | 第109-110页 |
| 2.7 野生型与OsAGP13-RNAi植株中木聚糖的分布 | 第110-111页 |
| 2.8 野生型与OsAGP13-RNAi植株花穗轴的转录组测序及分析 | 第111-124页 |
| 2.8.1 野生型与OsAGP13-RNAi植株中花穗轴样品的测序结果分析 | 第112-113页 |
| 2.8.2 野生型和OsAGP13-RNAi植株花穗轴中基因表达及功能分析 | 第113-116页 |
| 2.8.3 野生型和OsAGP13-RNAi植株花穗轴中差异表达的基因与其功能分析 | 第116-119页 |
| 2.8.4 野生型和OsAGP13-RNAi植株花穗轴中与维管束及细胞壁发育相关的差异表达基因功能分析 | 第119-124页 |
| 2.9 野生型和OsAGP13-RNAi植株花穗轴中维管束及细胞壁发育相关差异表达基因的表达验证 | 第124-125页 |
| 3. 讨论 | 第125-128页 |
| 3.1 水稻OsAGP13基因在维管束及顶端分生组织中特异表达 | 第125-126页 |
| 3.2 水稻OsAGP13基因参与维管束和细胞壁的发育 | 第126-127页 |
| 3.3 水稻OsAGP13基因影响维管束和细胞壁发育相关基因的表达 | 第127-128页 |
| 第四章 总讨论 | 第128-133页 |
| 1. 水稻XYLPs家族的鉴定与表达分析 | 第128-129页 |
| 2. 水稻OsAGP13基因影响维管束及细胞壁的发育 | 第129-133页 |
| 参考文献 | 第133-149页 |
| 附表 | 第149-162页 |
| 在读期间科研成果 | 第162-163页 |
| 致谢 | 第163页 |
