| 文献综述 | 第9-27页 |
| 一、 结直肠癌的侵袭和转移 | 第9-10页 |
| 二、 诱导型一氧化氮合酶的研究进展 | 第10-22页 |
| (一) NO的理化特性和生物合成 | 第11-12页 |
| (二) NO在肿瘤侵袭转移中的两面性作用 | 第12-15页 |
| (三) NO在肿瘤血管生成中的调控机制 | 第15-18页 |
| (四) NO对基质金属蛋白酶的激活机制 | 第18-21页 |
| (五) NOS在肿瘤组织中的定位 | 第21-22页 |
| (六) NO对肿瘤微循环的影响 | 第22页 |
| 三、 全反式维甲酸的抗肿瘤作用机制 | 第22-24页 |
| 四、 相关研究的临床应用前景 | 第24-26页 |
| 五、 结语 | 第26-27页 |
| 前言 | 第27-29页 |
| 第一部分 临床结肠癌免疫组织化学研究 | 第29-37页 |
| 材料与方法 | 第29-31页 |
| 一、 主要实验材料 | 第29-30页 |
| 二、 方法 | 第30-31页 |
| 结果 | 第31-37页 |
| 一、 结肠癌和正常结肠组织相关抗原的表达 | 第31-33页 |
| 二、 结肠癌检测结果与临床病理因素的关系 | 第33-35页 |
| 三、 结肠癌iNOS、MMP-9、VEGF与MVD关系 | 第35页 |
| 四、 结肠癌iNOS、MMP-9、VEGF表达的关系 | 第35-37页 |
| 第二部分 结肠癌细胞株的研究 | 第37-57页 |
| 实验一、结肠癌细胞株生物学活性测定 | 第37-44页 |
| 材料与方法 | 第37-40页 |
| 一、 主要实验材料 | 第37-38页 |
| 二、 方法 | 第38-40页 |
| (一) 细胞培养及处理方法 | 第38页 |
| (二) 细胞株形态学观察 | 第38页 |
| (三) 细胞株MTT检测 | 第38-39页 |
| (四) 细胞株流式细胞仪检测 | 第39-40页 |
| 结果 | 第40-44页 |
| 一、 结肠癌细胞株的形态学观察 | 第40页 |
| 二、 结肠癌细胞株的MTT分析 | 第40页 |
| 三、 结肠癌细胞株的细胞周期分析 | 第40-44页 |
| 实验二、结肠癌细胞株iNOS、VEGF和MMP-9的mRNA和蛋白表达 | 第44-57页 |
| 材料与方法 | 第44-51页 |
| 一、 主要实验材料 | 第44页 |
| 二、 方法 | 第44-51页 |
| (一) 细胞培养及处理方法 | 第44-45页 |
| (二) 引物设计 | 第45页 |
| (三) 总RNA逆转录聚合酶链反应检测 | 第45-46页 |
| (四) 目的基因逆转录聚合酶链反应检测 | 第46-47页 |
| (五) RNA印迹杂交 | 第47-49页 |
| (六) 免疫组化结肠癌细胞蛋白检测 | 第49页 |
| (七) 蛋白质印迹蛋白定量检测 | 第49-51页 |
| 结果 | 第51-57页 |
| 一、 结肠癌细胞总RNA质量检验结果 | 第51页 |
| 二、 结肠癌RT-PCR基因扩增结果 | 第51-52页 |
| 三、 结肠癌目的基因cDNA探针标记结果 | 第52-53页 |
| 四、 结肠癌细胞目的基因mRNA的表达水平 | 第53-55页 |
| 五、 结肠癌细胞蛋白免疫组化结果 | 第55页 |
| 六、 结肠癌细胞蛋白表达水平 | 第55-57页 |
| 讨论 | 第57-70页 |
| 一、 iNOS在结肠癌组织中的表达和作用 | 第57-59页 |
| 二、 VEGF在结肠癌组织中的表达和作用 | 第59-61页 |
| 三、 MMP-9在结肠癌组织中的表达和作用 | 第61-63页 |
| 四、 结肠癌iNOS与MMP-9及VEGF的关系研究 | 第63-66页 |
| 五、 全反式维甲酸对结肠癌的抑制作用 | 第66-70页 |
| 结论 | 第70-72页 |
| 参考文献 | 第72-82页 |
| 附图 | 第82-90页 |
| 读博期间发表文章 | 第90-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
| 中文摘要 | 第92-97页 |
| 英文摘要 | 第97页 |
| 吉林大学博士学位论文原创性声明 | 第102页 |
