| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 缩略语/符号说明 | 第14-16页 |
| 前言 | 第16-19页 |
| 研究现状、成果 | 第17页 |
| 研究目的、方法 | 第17-19页 |
| 一、烟酸对于大鼠糖尿病视网膜病变的影响 | 第19-56页 |
| 1.1 实验动物、主要仪器与试剂 | 第19-24页 |
| 1.1.1 实验对象 | 第19页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第19-20页 |
| 1.1.3 主要试剂 | 第20-22页 |
| 1.1.4 主要试剂配制 | 第22-24页 |
| 1.2 实验方法 | 第24-36页 |
| 1.2.1 大鼠DM动物模型的建立 | 第24页 |
| 1.2.2 成模后检测、分组及药物干预 | 第24页 |
| 1.2.3 大鼠血液总胆固醇及HDL的检测 | 第24页 |
| 1.2.4 视网膜切片的HE染色 | 第24-25页 |
| 1.2.5 视网膜免疫组织化学染色检测Claudin-5、Occludin、VEGF、VEGFR、Tie-2、CD45、VCAM-1、TNF-α | 第25-26页 |
| 1.2.6 伊文思蓝(EB)血管灌注造影视网膜铺片 | 第26-27页 |
| 1.2.7 视网膜组织伊文思蓝(EB)渗漏量检测 | 第27页 |
| 1.2.8 视网膜TUNEL染色 | 第27-28页 |
| 1.2.9 Western blot检测VEGF、VEGFR、Ang-1、Tie-2、VCAM-1、ZO-1、IL-6、TNF-α、NF-κB、 ICAM-1、iNOS在视网膜组织的表达 | 第28-31页 |
| 1.2.10 qRT-PCR 检测紧密连接蛋白 Occludin、Claudin-5、ZO-1、NF-κB、ICAM-1、iNOS 在视网膜组织的表达 | 第31-34页 |
| 1.2.11 qRT-PCR检测miR-126在视网膜组织的表达 | 第34-36页 |
| 1.3 统计学方法 | 第36页 |
| 1.4 结果 | 第36-52页 |
| 1.4.1 糖尿病动物模型的建立 | 第36页 |
| 1.4.2 大鼠血糖及体重的情况 | 第36-37页 |
| 1.4.3 各组大鼠总胆固醇以及HDL水平 | 第37-38页 |
| 1.4.4 视网膜HE染色 | 第38-39页 |
| 1.4.5 视网膜免疫组化检测结果 | 第39-42页 |
| 1.4.6 血管灌注造影视网膜铺片结果 | 第42-43页 |
| 1.4.7 视网膜伊文思蓝(EB)渗漏量测定 | 第43-44页 |
| 1.4.8 TUNEL染色视网膜细胞凋亡 | 第44-45页 |
| 1.4.9 视网膜Western blot检测结果 | 第45-50页 |
| 1.4.10 视网膜qRT-PCR检测结果 | 第50-52页 |
| 1.5 讨论 | 第52-55页 |
| 1.6 小结 | 第55-56页 |
| 二．烟酸对高糖HREC的作用 | 第56-69页 |
| 2.1 实验对象、主要仪器与试剂 | 第56-59页 |
| 2.1.1 实验对象 | 第56页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第56-57页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第57-58页 |
| 2.1.4 主要试剂、液体的配制 | 第58-59页 |
| 2.2 实验方法 | 第59-64页 |
| 2.2.1 HREC培养 | 第59页 |
| 2.2.2 实验分组 | 第59-60页 |
| 2.2.3 qRT-PCR检测miR-126在细胞的表达 | 第60-62页 |
| 2.2.4 细胞Western blot检测 | 第62-64页 |
| 2.3 统计学方法 | 第64页 |
| 2.4 结果 | 第64-67页 |
| 2.4.1 HREC形态变化及生长状况 | 第64-65页 |
| 2.4.2 各组miR-126 的检测 | 第65-66页 |
| 2.4.3 细胞Western blot检测结果 | 第66-67页 |
| 2.5 讨论 | 第67-68页 |
| 2.6 小结 | 第68-69页 |
| 全文结论 | 第69-70页 |
| 论文创新点 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-74页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第74-75页 |
| 综述 MicroRNA在糖尿病视网膜病变中的研究进展 | 第75-81页 |
| 综述参考文献 | 第78-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 个人简历 | 第82页 |
