贻贝（Mytilus edulis）抗菌肽的分离纯化
| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 引言 | 第9-11页 |
| 1 文献综述 | 第11-25页 |
| ·前言 | 第11-12页 |
| ·抗菌肽概述 | 第12-13页 |
| ·抗菌肽的分类 | 第13页 |
| ·抗菌肽的生物学性质 | 第13-16页 |
| ·抗菌性 | 第14页 |
| ·抗病毒和寄生虫活性 | 第14-15页 |
| ·抗肿瘤活性 | 第15-16页 |
| ·抗菌肽的作用机制 | 第16-18页 |
| ·抗菌肽与细菌细胞壁的作用 | 第16页 |
| ·抗菌肽与细菌细胞膜的作用 | 第16-18页 |
| ·受体介导作用 | 第18页 |
| ·水产动物抗菌肽 | 第18-20页 |
| ·两栖动物抗菌肽 | 第18-19页 |
| ·贝类抗菌肽 | 第19页 |
| ·甲壳类抗菌肽 | 第19页 |
| ·鱼类抗菌肽 | 第19-20页 |
| ·抗菌肽的应用 | 第20-22页 |
| ·在药物开发方面的应用 | 第20-21页 |
| ·抗菌肽制剂在消洗剂及化妆品的应用 | 第21-22页 |
| ·食品工业上的应用 | 第22页 |
| ·应用于新型绿色饲料添加剂中 | 第22页 |
| ·抗菌肽的市场 | 第22-23页 |
| ·国内关于抗菌肽的专利 | 第22-23页 |
| ·抗菌肽的市场需求 | 第23页 |
| ·抗菌肽的获得方法 | 第23-24页 |
| ·本课题研究的内容及意义 | 第24-25页 |
| 2 贻贝抗菌肽的粗提取 | 第25-32页 |
| ·材料与方法 | 第25-28页 |
| ·材料与试剂 | 第25页 |
| ·设备与仪器 | 第25-26页 |
| ·粗提取方法的选择 | 第26页 |
| ·蛋白质含量测定方法 | 第26-28页 |
| ·结果与讨论 | 第28-30页 |
| ·乙醇沉淀法 | 第28-29页 |
| ·硫酸铵沉淀法 | 第29-30页 |
| ·乙酸提取法 | 第30页 |
| ·本章小结 | 第30-32页 |
| 3 抗菌肽的纯化 | 第32-45页 |
| ·材料与方法 | 第32-37页 |
| ·材料与试剂 | 第32页 |
| ·仪器与装置 | 第32-34页 |
| ·Sephadex G-25纯化 | 第34-35页 |
| ·Sephacryl S-300纯化 | 第35页 |
| ·Sephacryl S-100纯化 | 第35页 |
| ·SDS-PAGE | 第35-37页 |
| ·结果与讨论 | 第37-44页 |
| ·Sephadex G-25纯化 | 第37-39页 |
| ·Sephacryl S-300纯化 | 第39-40页 |
| ·Sephacryl S-100纯化 | 第40-43页 |
| ·SDS-PAGE | 第43-44页 |
| ·本章小结 | 第44-45页 |
| 4 抗菌肽生物活性的研究 | 第45-61页 |
| ·材料与方法 | 第45-51页 |
| ·材料与试剂 | 第45-47页 |
| ·仪器与装置 | 第47页 |
| ·细菌混合方法的建立 | 第47-49页 |
| ·抗菌活性初步鉴定 | 第49页 |
| ·抗菌谱的测定 | 第49页 |
| ·计算杀菌率-浊度法 | 第49-50页 |
| ·最小抑菌浓度的测定 | 第50-51页 |
| ·温度稳定性的测定 | 第51页 |
| ·pH稳定性的测定 | 第51页 |
| ·结果与讨论 | 第51-59页 |
| ·细菌混合方法的建立 | 第51-52页 |
| ·抗菌活性初步鉴定 | 第52-53页 |
| ·抗菌谱的测定 | 第53-57页 |
| ·杀菌率测定 | 第57页 |
| ·最小抑菌浓度 | 第57-58页 |
| ·温度稳定性的测定 | 第58-59页 |
| ·pH稳定性的测定 | 第59页 |
| ·本章小结 | 第59-61页 |
| 结论与展望 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-71页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
