| 论文创新点 | 第6-7页 |
| 摘要 | 第7-8页 |
| ABSTRACT | 第8页 |
| 中英文对照 | 第11-13页 |
| 绪论 | 第13-15页 |
| 第1章 SJE16.7 在巨噬细胞活化中的作用 | 第15-42页 |
| 1.1 引言 | 第15-16页 |
| 1.2 实验材料 | 第16-22页 |
| 1.2.1 实验动物、细胞 | 第16页 |
| 1.2.2 实验试剂及其配制 | 第16-21页 |
| 1.2.3 主要实验器材及仪器 | 第21-22页 |
| 1.3 实验方法 | 第22-31页 |
| 1.3.1 固体培养基 | 第22页 |
| 1.3.2 GST-SjE16.7 的表达与纯化 | 第22-23页 |
| 1.3.3 His-SjE16.7 的表达与纯化 | 第23-24页 |
| 1.3.4 巨噬细胞Transwell实验 | 第24-25页 |
| 1.3.5 BCA测定蛋白浓度 | 第25页 |
| 1.3.6 细胞复苏 | 第25页 |
| 1.3.7 细胞冻存 | 第25-26页 |
| 1.3.8 细胞计数 | 第26页 |
| 1.3.9 小鼠成纤维细胞（L929）培养 | 第26页 |
| 1.3.10 骨髓巨噬细胞的提取与培养 | 第26-27页 |
| 1.3.11 抗原刺激巨噬细胞 | 第27页 |
| 1.3.12 骨髓巨噬细胞的mRNA的提取及Real-time PCR检测被刺激骨髓巨噬细胞的基因表达水平 | 第27-29页 |
| 1.3.13 ELISA检测抗原刺激骨髓巨噬细胞的免疫反应 | 第29页 |
| 1.3.14 Western检测抗原刺激骨髓巨噬细胞蛋白表达水平 | 第29-30页 |
| 1.3.15 流式检测技术 | 第30页 |
| 1.3.16 Genistein抑制实验 | 第30页 |
| 1.3.17 数据统计与分析 | 第30-31页 |
| 1.4 实验结果 | 第31-39页 |
| 1.4.1 SjE16.7 诱导巨噬细胞移行 | 第31-33页 |
| 1.4.2 SjE16.7 刺激巨噬细胞分泌细胞因子 | 第33-34页 |
| 1.4.3 抗原在巨噬细胞的极化方面的免疫学研究 | 第34-36页 |
| 1.4.4 SjE16.7 活化巨噬细胞的信号通路 | 第36-37页 |
| 1.4.5 Genistein抑制巨噬细胞的分泌IL-10 | 第37-39页 |
| 1.5 讨论 | 第39-42页 |
| 第2章 SJE16.7 促进日本血吸虫虫卵肉芽肿的形成和发展 | 第42-54页 |
| 2.1 引言 | 第42页 |
| 2.2 实验材料 | 第42-46页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第42页 |
| 2.2.2 实验试剂及其配制 | 第42-44页 |
| 2.2.3 主要实验器材及仪器 | 第44-46页 |
| 2.3 实验方法 | 第46-49页 |
| 2.3.1 抗原乳化 | 第46页 |
| 2.3.2 小鼠日本血吸虫模型的构建与虫卵的提取 | 第46-47页 |
| 2.3.3 SEA的制备 | 第47页 |
| 2.3.4 His-SjE16.7 小鼠多克隆抗体的制备 | 第47页 |
| 2.3.5 多克隆抗体的纯化 | 第47-48页 |
| 2.3.6 ELISA检测抗原刺激骨髓巨噬细胞的IL-10 | 第48页 |
| 2.3.7 小鼠肺虫卵肉芽肿模型的构建 | 第48-49页 |
| 2.3.8 免疫组化实验 | 第49页 |
| 2.3.9 数据分析与统计 | 第49页 |
| 2.4 实验结果 | 第49-52页 |
| 2.4.1 SjE16.7 活化巨噬细胞与SEA趋势不完全相同 | 第49-50页 |
| 2.4.2 SjE16.7 在虫卵肉芽肿的形成中的作用 | 第50-52页 |
| 2.5 讨论 | 第52-54页 |
| 总结 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-59页 |
| 综述 巨噬细胞在血吸虫感染中的作用 | 第59-69页 |
| 参考文献 | 第66-69页 |
| 致谢 | 第69-71页 |
| 已发表论文 | 第71页 |
