| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 英文缩略词表 | 第9-16页 |
| 前言 | 第16-18页 |
| 第一章 智能控释系统的制备及性质考察 | 第18-39页 |
| 1 仪器与试剂 | 第18-20页 |
| 1.1 仪器 | 第18-19页 |
| 1.2 试剂 | 第19-20页 |
| 2 实验方法 | 第20-25页 |
| 2.1 脂质体的制备 | 第20页 |
| 2.2 脂质体的处方筛选 | 第20-21页 |
| 2.2.1 磷脂与胆固醇的比例 | 第20页 |
| 2.2.2 孵育时间 | 第20页 |
| 2.2.3 药脂比 | 第20-21页 |
| 2.3 荷载ABC脂质体的制备 | 第21页 |
| 2.4 脂质体表面金纳米壳的修饰 | 第21页 |
| 2.4.1 HAuCl_4与Vc用量的选择 | 第21页 |
| 2.5 适配体修饰的DTX/ABC@TSLs@Au的制备 | 第21-22页 |
| 2.6 智能控释系统的表征 | 第22-23页 |
| 2.6.1 紫外可见全波长扫描 | 第22页 |
| 2.6.2 粒径电位分布 | 第22页 |
| 2.6.3 透射电镜及EDS元素分析 | 第22页 |
| 2.6.4 光热转换性能 | 第22页 |
| 2.6.5 DSC分析 | 第22页 |
| 2.6.6 凝胶电泳分析 | 第22-23页 |
| 2.6.7 体外超声成像 | 第23页 |
| 2.6.8 稳定性 | 第23页 |
| 2.7 DTX含量测定方法的建立 | 第23-24页 |
| 2.7.1 紫外检测波长的确定 | 第23页 |
| 2.7.2 色谱条件 | 第23-24页 |
| 2.7.3 专属性 | 第24页 |
| 2.7.4 标准曲线的建立 | 第24页 |
| 2.7.5 回收率 | 第24页 |
| 2.7.6 精密度 | 第24页 |
| 2.8 包封率的测定 | 第24-25页 |
| 2.9 体外释药行为考察 | 第25页 |
| 3 结果与讨论 | 第25-38页 |
| 3.1 脂质体的处方筛选 | 第25-27页 |
| 3.1.1 磷脂与胆固醇的比例 | 第25-26页 |
| 3.1.2 孵育时间 | 第26页 |
| 3.1.3 药脂比 | 第26-27页 |
| 3.1.4 脂质体的最优处方 | 第27页 |
| 3.2 HAuCl_4与Vc用量的选择 | 第27-28页 |
| 3.3 智能控释系统的表征 | 第28-34页 |
| 3.3.1 紫外可见全波长扫描 | 第28-29页 |
| 3.3.2 粒径电位分布 | 第29页 |
| 3.3.3 透射电镜及EDS元素分析 | 第29-30页 |
| 3.3.4 光热转换性能 | 第30-31页 |
| 3.3.5 DSC分析 | 第31-32页 |
| 3.3.6 凝胶电泳分析 | 第32-33页 |
| 3.3.7 体外超声成像 | 第33-34页 |
| 3.3.8 稳定性 | 第34页 |
| 3.4 DTX含量HPLC测定结果 | 第34-37页 |
| 3.4.1 检测波长 | 第34-35页 |
| 3.4.2 专属性 | 第35页 |
| 3.4.3 标准曲线 | 第35-36页 |
| 3.4.4 回收率 | 第36-37页 |
| 3.4.5 精密度 | 第37页 |
| 3.5 包封率的测定 | 第37页 |
| 3.6 体外释药行为考察 | 第37-38页 |
| 4 本章小结 | 第38-39页 |
| 第二章 智能控释系统的体外抗肿瘤活性研究 | 第39-53页 |
| 1 仪器与试剂 | 第40-41页 |
| 1.1 仪器 | 第40页 |
| 1.2 试剂 | 第40-41页 |
| 1.3 主要试剂的配制 | 第41页 |
| 2 实验方法 | 第41-45页 |
| 2.1 细胞培养 | 第41页 |
| 2.2 细胞毒性实验 | 第41-43页 |
| 2.2.1 SRB法 | 第41-42页 |
| 2.2.2 ABC@TSLs@Au体外细胞毒性 | 第42页 |
| 2.2.3 DTX/ABC@TSLs@Au-DA细胞抑制率 | 第42-43页 |
| 2.3 细胞摄取 | 第43-44页 |
| 2.3.1 FITC标记智能控释系统 | 第43页 |
| 2.3.2 MCF-7 细胞摄取 | 第43-44页 |
| 2.4 细胞周期 | 第44页 |
| 2.5 细胞凋亡 | 第44-45页 |
| 2.6 数据统计与分析 | 第45页 |
| 3 结果与讨论 | 第45-52页 |
| 3.1 ABC@TSLs@Au体外细胞毒性 | 第45-46页 |
| 3.2 DTX/ABC@TSLs@Au-DA细胞抑制率 | 第46-47页 |
| 3.3 细胞摄取 | 第47-49页 |
| 3.4 细胞周期 | 第49-51页 |
| 3.5 细胞凋亡 | 第51-52页 |
| 4 本章小结 | 第52-53页 |
| 第三章 智能控释系统在荷瘤小鼠体内的药动学和组织分布研究 | 第53-66页 |
| 1 仪器与试剂 | 第53-54页 |
| 1.1 仪器 | 第53页 |
| 1.2 试剂 | 第53-54页 |
| 1.3 实验动物及细胞 | 第54页 |
| 2 实验方法 | 第54-57页 |
| 2.1 细胞培养 | 第54页 |
| 2.2 荷瘤小鼠模型的构建 | 第54-55页 |
| 2.3 生物样品中药物含量测定方法的建立 | 第55-56页 |
| 2.3.1 色谱条件 | 第55页 |
| 2.3.2 血浆样品的制备及前处理 | 第55页 |
| 2.3.3 方法专属性 | 第55页 |
| 2.3.4 标准曲线 | 第55页 |
| 2.3.5 回收率 | 第55-56页 |
| 2.3.6 精密度 | 第56页 |
| 2.3.7 稳定性 | 第56页 |
| 2.4 智能控释系统的体内药动学研究 | 第56页 |
| 2.5 智能控释系统的体内组织学分布及肿瘤靶向性研究 | 第56-57页 |
| 3 结果与讨论 | 第57-65页 |
| 3.1 方法学考察 | 第57-60页 |
| 3.1.1 专属性 | 第57-58页 |
| 3.1.2 标准曲线 | 第58页 |
| 3.1.3 回收率 | 第58页 |
| 3.1.4 精密度 | 第58-59页 |
| 3.1.5 稳定性 | 第59-60页 |
| 3.2 智能控释系统的体内药动学研究 | 第60-62页 |
| 3.2.1 血药浓度的测定 | 第60-61页 |
| 3.2.2 药动学参数计算 | 第61-62页 |
| 3.3 智能控释系统的体内组织学分布及肿瘤靶向性研究 | 第62-65页 |
| 4 本章小结 | 第65-66页 |
| 第四章 智能控释系统的体内药效学与超声成像研究 | 第66-76页 |
| 1 仪器与试剂 | 第66-67页 |
| 1.1 仪器 | 第66-67页 |
| 1.2 试剂 | 第67页 |
| 1.3 实验动物及细胞 | 第67页 |
| 2 实验方法 | 第67-69页 |
| 2.1 细胞培养 | 第67页 |
| 2.2 荷瘤小鼠模型的构建 | 第67页 |
| 2.3 实验分组及给药 | 第67-68页 |
| 2.4 药效评价指标 | 第68页 |
| 2.4.1 各组小鼠给药前后体重及瘤体积的测定 | 第68页 |
| 2.4.2 抑瘤率的计算 | 第68页 |
| 2.4.3 肿瘤组织病理学检测 | 第68页 |
| 2.5 超声成像 | 第68-69页 |
| 2.5.1 体内超声成像方法的建立 | 第68-69页 |
| 2.5.2 DTX/ABC@TSLs@Au-DA溶液瘤内注射超声成像 | 第69页 |
| 2.5.3 DTX/ABC@TSLs@Au-DA溶液尾静脉注射超声成像 | 第69页 |
| 2.6 统计学分析 | 第69页 |
| 3 结果与讨论 | 第69-75页 |
| 3.1 智能控释系统抑瘤效果的评价 | 第69-71页 |
| 3.2 病理学检测 | 第71-73页 |
| 3.3 超声成像 | 第73-75页 |
| 3.3.1 DTX/ABC@TSLs@Au-DA溶液瘤内注射超声成像 | 第73-74页 |
| 3.3.2 DTX/ABC@TSLs@Au-DA溶液尾静脉注射超声成像 | 第74-75页 |
| 4 本章小结 | 第75-76页 |
| 全文总结 | 第76-78页 |
| 参考文献 | 第78-84页 |
| 致谢 | 第84-85页 |
| 个人简历 | 第85页 |
