| 中文摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 前言 | 第9-12页 |
| 实验材料和方法 | 第12-22页 |
| 1 实验动物和细胞 | 第12页 |
| 2 实验仪器 | 第12页 |
| 3 实验试剂 | 第12-13页 |
| 4 实验方法 | 第13-21页 |
| 4.1 溶液配制 | 第13-14页 |
| 4.2 细胞培养 | 第14-15页 |
| 4.3 Western Blot免疫印迹 | 第15-16页 |
| 4.4 总RNA提取和RT-PCR | 第16-18页 |
| 4.5 MTT检测 | 第18页 |
| 4.6 ELISA | 第18-19页 |
| 4.7 增殖实验 | 第19页 |
| 4.8 迁移实验 | 第19-20页 |
| 4.9 体内肿瘤模型建立 | 第20页 |
| 4.10 流式细胞技术 | 第20页 |
| 4.11 免疫细胞组织化学 | 第20-21页 |
| 4.12 小鼠活体成像 | 第21页 |
| 5 数据处理和统计学方法 | 第21-22页 |
| 实验结果 | 第22-31页 |
| 1 GL261-GFP-SHMFG-E8 细胞系建立和鉴定 | 第22-24页 |
| 2 沉默MFG-E8 能够减慢神经胶质瘤增殖、迁移和增强GL261 对抗肿瘤药物BCNU 的敏感性 | 第24-26页 |
| 3 沉默MFG-E8 能够下调细胞生存信号蛋白 | 第26-27页 |
| 4 GL261 神经胶质瘤细胞沉默MFG-E8 能够削减体内肿瘤进程 | 第27-28页 |
| 5 沉默MFG-E8 能够降低肿瘤组织内CD11B和CD206 的表达 | 第28-30页 |
| 6 重组蛋白MFG-E8 (RMMFG-E8) 能够增加小胶质细胞M2 型标记物的表达 | 第30-31页 |
| 讨论 | 第31-33页 |
| 小结 | 第33-34页 |
| 参考文献 | 第34-38页 |
| 综述 神经胶质瘤与神经胶质瘤相关巨噬细胞/小胶质细胞的关系研究 | 第38-49页 |
| 参考文献 | 第44-49页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第49-50页 |
| 附录：缩略词表 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
