| 附录 | 第7-9页 |
| 中文摘要 | 第9-11页 |
| ABSTRACT | 第11-12页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 第一部分 内异症中DNA甲基化相关酶的表达 | 第16-29页 |
| 引言 | 第16-17页 |
| 1 材料 | 第17-19页 |
| 1.1 研究对象 | 第17-18页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第18-19页 |
| 1.3 主要试剂 | 第19页 |
| 2 实验方法 | 第19-24页 |
| 2.1 RT-PCR检测相关基因表达 | 第19-22页 |
| 2.2 免疫组织化学法 | 第22-23页 |
| 2.3 统计学分析 | 第23-24页 |
| 3 实验结果 | 第24-26页 |
| 3.1 DNMTs、TETs在子宫内膜异位症中的表达 | 第24-25页 |
| 3.2 不同月经周期中DNMTs在对照组及异位子宫内膜中的表达 | 第25-26页 |
| 4 讨论 | 第26-29页 |
| 第二部分 内异症中StAR、NR5A1表达与基因启动子甲基化的相关性 | 第29-55页 |
| 引言 | 第29-30页 |
| 1 材料 | 第30-32页 |
| 1.1 研究对象 | 第30页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第30页 |
| 1.3 主要试剂 | 第30-31页 |
| 1.4 常用溶液配制 | 第31-32页 |
| 2 实验方法 | 第32-42页 |
| 2.1 RT-PCR检测相关基因表达 | 第32页 |
| 2.2 亚硫酸氢盐测序（Bisulfite DNA Sequencing） | 第32-36页 |
| 2.3 甲基化特异性PCR（Methylation-specific PCR, MSP） | 第36-37页 |
| 2.4 高分辨率溶解曲线分析 | 第37-38页 |
| 2.5 子宫内膜细胞的原代培养 | 第38-42页 |
| 2.6 统计学分析 | 第42页 |
| 3 实验结果 | 第42-53页 |
| 3.1 StAR、NR5A1、ERβ 在内异症组织中的表达 | 第42-43页 |
| 3.2 DNA甲基化检测方法的选择 | 第43-46页 |
| 3.3 StAR、NR5A1基因启动子在内异症中的DNA甲基化状态 | 第46-49页 |
| 3.4 StAR、NR5A1在内异症中mRNA表达与DNA甲基化程度的相关性分析 | 第49-50页 |
| 3.5 原代子宫内膜细胞培养 | 第50-52页 |
| 3.6 ADC处理后StAR、NR5A1 mRNA水平及启动子DNA甲基化修饰的改变 | 第52-53页 |
| 4 讨论 | 第53-55页 |
| 第三部分 LXA_4、E_2、IL-1β 对子宫内膜间质细胞中StAR、NR5A1mRNA水平及启动子DNA甲基化修饰状态的影响 | 第55-66页 |
| 引言 | 第55-57页 |
| 1 材料 | 第57-58页 |
| 1.1 研究对象 | 第57页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第57页 |
| 1.3 主要试剂 | 第57-58页 |
| 1.4 所用药品配制 | 第58页 |
| 2 实验方法 | 第58-59页 |
| 2.1 子宫内膜细胞的原代培养 | 第58页 |
| 2.2 细胞分组和处理 | 第58-59页 |
| 2.3 统计学分析 | 第59页 |
| 3 实验结果 | 第59-64页 |
| 3.1 LXA_4、E_2、IL-1β 对子宫内膜间质细胞中StAR m RNA水平的影响 | 第59-60页 |
| 3.2 雌激素对子宫内膜间质细胞中StAR NR5A1启动子DNA甲基化水平的影响 | 第60页 |
| 3.3 脂氧素对子宫内膜间质细胞中StAR NR5A1启动子DNA甲基化水平的影响 | 第60-61页 |
| 3.4 白介素 1β 对子宫内膜间质细胞中StAR NR5A1启动DNA甲基化水平的影响 | 第61-62页 |
| 3.5 LXA_4、E_2对子宫内膜间质细胞中DNA甲基化相关mRNA表达的影响 | 第62-64页 |
| 4 讨论 | 第64-66页 |
| 全文结论 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-75页 |
| 文献综述 | 第75-89页 |
| 参考文献 | 第84-89页 |
| 致谢 | 第89-90页 |
