| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 第一章 绪论 | 第17-44页 |
| 1.1 分子印迹技术概述 | 第17-18页 |
| 1.2 分子印迹技术原理及分类 | 第18-19页 |
| 1.2.1 分子印迹技术的基本原理 | 第18页 |
| 1.2.2 分子印迹技术的种类 | 第18-19页 |
| 1.3 分子印迹聚合物制备方法 | 第19-23页 |
| 1.3.1 本体聚合 | 第20页 |
| 1.3.2 悬浮聚合 | 第20-21页 |
| 1.3.3 乳液聚合 | 第21页 |
| 1.3.4 两步溶胀聚合 | 第21-22页 |
| 1.3.5 沉淀聚合 | 第22页 |
| 1.3.6 表面分子印迹 | 第22-23页 |
| 1.4 分子印迹膜 | 第23-29页 |
| 1.4.1 分子印迹膜的优点 | 第23-24页 |
| 1.4.2 分子印迹膜的种类 | 第24-27页 |
| 1.4.3 分子印迹膜的应用 | 第27-29页 |
| 1.5 光子晶体 | 第29-42页 |
| 1.5.1 光子晶体的定义 | 第29-31页 |
| 1.5.2 光子晶体的分类 | 第31-32页 |
| 1.5.3 光子晶体的制备 | 第32-35页 |
| 1.5.4 光子晶体在生化检测方向的应用 | 第35-40页 |
| 1.5.5 光子晶体与分子印迹技术的结合 | 第40-42页 |
| 1.6 本课题研究的内容及意义 | 第42-44页 |
| 第二章 溶菌酶分子印迹膜的制备及应用 | 第44-73页 |
| 2.1 引言 | 第44页 |
| 2.2 实验试剂及仪器 | 第44-46页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第44-45页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第45-46页 |
| 2.3 实验方法 | 第46-49页 |
| 2.3.1 载玻片硅烷化 | 第46页 |
| 2.3.2 反应原料的纯化 | 第46页 |
| 2.3.3 溶菌酶印迹聚合物膜的制备 | 第46-47页 |
| 2.3.4 模板分子的洗脱 | 第47页 |
| 2.3.5 溶菌酶的荧光测定法 | 第47页 |
| 2.3.6 吸附实验 | 第47-48页 |
| 2.3.7 SDS-PAGE凝胶电泳条件 | 第48页 |
| 2.3.8 HPLC测定条件 | 第48页 |
| 2.3.9 蛋清中溶菌酶含量的测定 | 第48-49页 |
| 2.3.10分子印迹聚合物膜重复使用性的测定 | 第49页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第49-71页 |
| 2.4.1 建立荧光光谱仪检测聚合物膜上Lyz的标准曲线 | 第49-50页 |
| 2.4.2 模板分子洗脱条件的确定 | 第50-51页 |
| 2.4.3 红外光谱（FT-IR）对MIP膜洗脱效果的表征 | 第51-52页 |
| 2.4.4 膜表面形态分析 | 第52-55页 |
| 2.4.5 印迹聚合物膜的吸附动力学 | 第55-56页 |
| 2.4.6 MIP膜与NIP膜的Scatchard分析 | 第56-60页 |
| 2.4.7 p H对于吸附效果的影响 | 第60-61页 |
| 2.4.8 吸附等温线 | 第61-63页 |
| 2.4.9 MIP膜的选择性吸附实验 | 第63-64页 |
| 2.4.10 MIP/NIP膜竞争吸附实验 | 第64-66页 |
| 2.4.11 MIP膜对Lyz与使用FITC-BSA的竞争吸附实验 | 第66-67页 |
| 2.4.12 竞争吸附实验 | 第67-70页 |
| 2.4.13 蛋清中溶菌酶含量的测定 | 第70页 |
| 2.4.14 重复性实验 | 第70-71页 |
| 2.5 本章小结 | 第71-73页 |
| 第三章 聚苯乙烯微球作为致孔剂的溶菌酶分子印迹膜的制备及应用 | 第73-100页 |
| 3.1 引言 | 第73页 |
| 3.2 实验试剂及仪器 | 第73-75页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第73-74页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第74-75页 |
| 3.3 实验方法 | 第75-77页 |
| 3.3.1 载玻片硅烷化 | 第75页 |
| 3.3.2 聚苯乙烯微球的制备 | 第75页 |
| 3.3.3 反应原料的纯化 | 第75页 |
| 3.3.4 以聚苯乙烯微球为致孔剂的印迹聚合物膜（PS-MIP）的制备 | 第75-76页 |
| 3.3.5 模板分子的洗脱 | 第76页 |
| 3.3.6 吸附实验 | 第76页 |
| 3.3.7 竞争吸附实验 | 第76页 |
| 3.3.8 SDS-PAGE凝胶电泳条件 | 第76页 |
| 3.3.9 HPLC测定条件 | 第76-77页 |
| 3.3.10 蛋清中溶菌酶含量的测定 | 第77页 |
| 3.3.11 分子印迹聚合物膜重复使用性的测定 | 第77页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第77-98页 |
| 3.4.1 聚苯乙烯微球形态表征 | 第77-78页 |
| 3.4.2 PS-MIP膜AFM扫描图像 | 第78-79页 |
| 3.4.3 四氢呋喃对吸附结果的影响 | 第79-80页 |
| 3.4.4 不同聚苯乙烯浓度对吸附性能的影响 | 第80-82页 |
| 3.4.5 傅里叶红外光谱（FT-IR）表征 | 第82-83页 |
| 3.4.6 PS-MIP膜的吸附动力学 | 第83-84页 |
| 3.4.7 PS-MIP膜的Scatchard分析 | 第84-87页 |
| 3.4.8 p H对于吸附效果的影响 | 第87-88页 |
| 3.4.9 吸附等温线 | 第88-90页 |
| 3.4.10 选择性吸附实验 | 第90-92页 |
| 3.4.11 PS-MIP/PS-NIP竞争吸附 | 第92-93页 |
| 3.4.12 竞争实验 | 第93-97页 |
| 3.4.13 蛋清中溶菌酶含量的测定 | 第97页 |
| 3.4.14 PS-MIP膜重复性实验 | 第97-98页 |
| 3.5 本章小结 | 第98-100页 |
| 第四章 左羟丙哌嗪分子印迹光子晶体膜的制备及表征 | 第100-133页 |
| 4.1 引言 | 第100页 |
| 4.2 实验试剂和仪器 | 第100-102页 |
| 4.2.1 实验材料及试剂 | 第100-101页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第101-102页 |
| 4.3 实验方法 | 第102-107页 |
| 4.3.1 功能单体的纯化 | 第102页 |
| 4.3.2 交联剂的纯化 | 第102-103页 |
| 4.3.3 引发剂的纯化 | 第103页 |
| 4.3.4 聚合条件的优化 | 第103页 |
| 4.3.5 分子印迹聚合物吸附实验 | 第103页 |
| 4.3.6 纳米硅胶的制备 | 第103-104页 |
| 4.3.7 硅胶光子晶体（PCS）膜的制备 | 第104页 |
| 4.3.8 分子印迹光子晶体膜（MIPC）的制备 | 第104-105页 |
| 4.3.9 吸附实验 | 第105-106页 |
| 4.3.10 光子晶体分子印迹聚合物膜对LDPZ结构类似物的吸附 | 第106-107页 |
| 4.3.11 实际样品中LDPZ浓度的测定 | 第107页 |
| 4.3.12 MIPC膜重复使用性的测定 | 第107页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第107-131页 |
| 4.4.1 模板分子与MAA比例 | 第107-109页 |
| 4.4.2 聚合体系的比例 | 第109页 |
| 4.4.3 纳米硅胶的SEM扫描电镜图 | 第109-110页 |
| 4.4.4 硅胶光子晶体的特征吸收峰 | 第110-112页 |
| 4.4.5 MIPC膜的AFM扫描图像 | 第112-113页 |
| 4.4.6 印迹聚合物膜的扫描电镜图 | 第113-115页 |
| 4.4.7 印迹聚合物膜的吸附动力学 | 第115-116页 |
| 4.4.8 PBS缓冲液浓度对吸附效果的影响 | 第116-117页 |
| 4.4.9 光子晶体聚合物在不同pH条件下对LDPZ的响应 | 第117-122页 |
| 4.4.10 吸附等温线 | 第122-124页 |
| 4.4.11 Scatchard方程分析 | 第124-126页 |
| 4.4.12 光子晶体聚合物对LDPZ结构类似物的响应 | 第126-129页 |
| 4.4.13 实际样品中LDPZ含量的测定 | 第129-130页 |
| 4.4.14 MIPC膜重复性实验 | 第130-131页 |
| 4.5 本章小结 | 第131-133页 |
| 结论与展望 | 第133-137页 |
| 参考文献 | 第137-150页 |
| 攻读学位期间发表论文与研究成果清单 | 第150-151页 |
| 致谢 | 第151-152页 |
| 作者简介 | 第152页 |
