| 缩略语表 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 文献回顾 | 第14-28页 |
| 第一部分 miR-182和瘦素在卵巢癌患者组织中的表达及其与卵巢癌发展的相关性研究 | 第28-48页 |
| 1 资料 | 第28-30页 |
| 1.1 研究对象 | 第28页 |
| 1.2 纳入排除标准 | 第28-29页 |
| 1.3 观察指标 | 第29页 |
| 1.4 实验试剂 | 第29-30页 |
| 1.5 实验仪器 | 第30页 |
| 2 方法 | 第30-38页 |
| 2.1 RT-PCR检测两组患者组织中瘦素mRNA表达 | 第30-32页 |
| 2.2 蛋白质印迹法（Western Blot）检测两组患者组织中瘦素蛋白水平 | 第32-35页 |
| 2.3 RT-qPCR 检测卵巢癌患者组织中 miR-182 表达 | 第35-37页 |
| 2.4 酶联免疫吸附法（ELISA）检查患者血清和尿液中的瘦素水平 | 第37-38页 |
| 2.5 统计学方法 | 第38页 |
| 3 结果 | 第38-45页 |
| 3.1 瘦素mRNA在两组患者组织中的表达 | 第38-40页 |
| 3.2 瘦素蛋白在两组患者组织中的表达 | 第40-41页 |
| 3.3 miR-182 在卵巢癌组织中的表达 | 第41-43页 |
| 3.4 酶联免疫吸附法检测卵巢癌患者血清及尿液中瘦素含量 | 第43-44页 |
| 3.5 卵巢癌患者组织中miR-182与瘦素mRNA和蛋白表达的相关性分析 | 第44-45页 |
| 4 讨论 | 第45-48页 |
| 第二部分 miR-182对瘦素诱导的卵巢癌细胞生长的调控作用 | 第48-64页 |
| 1 材料 | 第48-50页 |
| 1.1 主要试剂 | 第48-49页 |
| 1.2 主要仪器 | 第49-50页 |
| 2 方法 | 第50-54页 |
| 2.1 卵巢癌细胞培养 | 第50-51页 |
| 2.2 MTT法检测卵巢癌细胞增殖 | 第51页 |
| 2.3 流式细胞术检测卵巢癌细胞凋亡变化情况 | 第51-52页 |
| 2.4 miR-182反义序列的瞬时转染 | 第52页 |
| 2.5 蛋白质印迹法 | 第52-53页 |
| 2.6 统计学方法 | 第53-54页 |
| 3 结果 | 第54-61页 |
| 3.1 不同浓度瘦素作用后卵巢癌细胞增殖和凋亡率的变化 | 第54-55页 |
| 3.2 不同浓度瘦素作用对卵巢癌细胞中mi R-182表达的影响 | 第55-56页 |
| 3.3 瘦素对卵巢癌细胞中FOXO3及其下游基因p27/Bim的影响 | 第56-57页 |
| 3.4 miR-182 antago-miR对瘦素诱导的卵巢癌细胞中miR-182表达的抑制作用 | 第57-59页 |
| 3.5 miR-182 antago-miR对瘦素诱导的卵巢癌细胞增殖的作用 | 第59页 |
| 3.6 miR-182 antago-miR对瘦素诱导的FOXO3及其下游靶基因p27和Bim表达的影响 | 第59-61页 |
| 4 讨论 | 第61-64页 |
| 小结 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-76页 |
| 个人简历及研究成果 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77页 |
