| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第1章 绪论 | 第9-25页 |
| 1.1 研究背景 | 第9页 |
| 1.2 炎症性肠病的临床表现 | 第9-10页 |
| 1.3 炎症性肠病的发病机制 | 第10-13页 |
| 1.3.1 遗传因素 | 第10-11页 |
| 1.3.2 免疫因素 | 第11-12页 |
| 1.3.3 肠道菌群 | 第12页 |
| 1.3.4 环境因素 | 第12-13页 |
| 1.4 IBD中MicroRNAs的研究现状 | 第13-14页 |
| 1.5 IBD与结直肠癌 | 第14页 |
| 1.6 IBD治疗的研究现状 | 第14页 |
| 1.7 NADPH氧化酶 | 第14-18页 |
| 1.7.1 NOX1 | 第15-16页 |
| 1.7.2 NOX2 | 第16页 |
| 1.7.3 NOX4 | 第16-17页 |
| 1.7.4 DUOX2 | 第17-18页 |
| 1.8 NADPH氧化酶和IBD的研究进展 | 第18-19页 |
| 1.9 5-羟色胺（5-HT） | 第19-22页 |
| 1.9.1 5-HT产生和代谢的生化过程 | 第19-20页 |
| 1.9.2 5-HT受体（5-HTR） | 第20-21页 |
| 1.9.3 5-HT在胃肠道的生理作用 | 第21-22页 |
| 1.10 5-HT与IBD的研究进展 | 第22-25页 |
| 第2章 实验设计与研究目的 | 第25-27页 |
| 2.1 实验设计 | 第25页 |
| 2.2 研究目的 | 第25-27页 |
| 第3章 材料与方法 | 第27-39页 |
| 3.1 实验动物和材料 | 第27-29页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第27页 |
| 3.1.2 研究试剂 | 第27-28页 |
| 3.1.3 主要仪器和设备 | 第28-29页 |
| 3.2 实验方法 | 第29-38页 |
| 3.2.1 动物分组和构建模型 | 第29-30页 |
| 3.2.2 标本取材 | 第30页 |
| 3.2.3 观测指标 | 第30页 |
| 3.2.4 HE染色操作流程和组织病理学评分标准 | 第30-31页 |
| 3.2.5 免疫组化操作流程和结果评分标准 | 第31-33页 |
| 3.2.6 引物设计与合成 | 第33-34页 |
| 3.2.7 结肠组织RNA的提取和cDNA的合成 | 第34-35页 |
| 3.2.8 实时荧光定量PCR（qRT-PCR） | 第35-36页 |
| 3.2.9 Western blot | 第36-38页 |
| 3.3 统计学方法 | 第38-39页 |
| 第4章 实验结果 | 第39-53页 |
| 4.1 小鼠活动情况观察 | 第39页 |
| 4.2 小鼠结肠长度、血便及DAI评分 | 第39-41页 |
| 4.3 结肠组织病理学表现及评分 | 第41-44页 |
| 4.4 B5-HT招募白细胞在结肠组织聚集浸润 | 第44页 |
| 4.5 结肠组织IL-1β、IL-6、IL-8 等mRNA的表达 | 第44-46页 |
| 4.6 结肠组织Nox1、2、4 和Duox2 m RNA的表达 | 第46-47页 |
| 4.7 结肠组织Nox1、2、4 和Duox2蛋白的表达 | 第47-50页 |
| 4.8 Western blot结果 | 第50-53页 |
| 第5章 讨论 | 第53-57页 |
| 5.1 5-HT募集白细胞并加重DSS诱导的实验性结肠炎 | 第53-54页 |
| 5.2 5-HT影响结肠NADPH氧化酶的表达 | 第54-57页 |
| 5.2.1 5-HT上调结肠上皮细胞Nox1和Duox2的表达 | 第54-55页 |
| 5.2.2 5-HT和DSS上调小鼠结肠Nox2和Nox4的表达 | 第55-57页 |
| 第6章 结论 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-77页 |
| 缩略语词汇表 | 第77-79页 |
| 致谢 | 第79-81页 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第81页 |
